| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 缩略词表 | 第12-14页 |
| 文献综述 | 第14-60页 |
| 1.1 生物质能 | 第14-16页 |
| 1.1.1 生物质能概念 | 第14页 |
| 1.1.2 能源植物和能源作物 | 第14-15页 |
| 1.1.3 纤维素乙醇的发展 | 第15-16页 |
| 1.2 植物细胞壁结构 | 第16-28页 |
| 1.2.1 纤维素结构 | 第17-20页 |
| 1.2.2 半纤维素结构 | 第20-23页 |
| 1.2.3 木质素结构 | 第23-24页 |
| 1.2.4 植物细胞壁组分之间的互作 | 第24-28页 |
| 1.3 植物细胞壁生物合成 | 第28-51页 |
| 1.3.1 纤维素生物合成 | 第28-46页 |
| 1.3.2 半纤维素生物合成 | 第46-50页 |
| 1.3.3 木质素合成 | 第50-51页 |
| 1.4 生物质降解 | 第51-55页 |
| 1.4.1 生物质预处理 | 第51-52页 |
| 1.4.2 纤维素与生物质降解 | 第52-53页 |
| 1.4.3 半纤维素与生物质降解 | 第53-54页 |
| 1.4.4 木质素与生物质降解 | 第54-55页 |
| 1.5 细胞壁与植物抗倒伏 | 第55-59页 |
| 1.5.1 水稻倒伏鉴定和评价 | 第56页 |
| 1.5.2 植物茎秆生理形态与抗倒伏关系 | 第56-57页 |
| 1.5.3 细胞壁结构与抗倒伏 | 第57-58页 |
| 1.5.4 水稻细胞壁与抗倒伏研究展望 | 第58-59页 |
| 1.6 本研究目的与意义 | 第59-60页 |
| 第一章 芒草半纤维素结构与生物质酶解产糖 | 第60-78页 |
| 摘要 | 第60-61页 |
| Abstract | 第61-63页 |
| 2 实验材料和方法 | 第63-69页 |
| 2.1 实验材料 | 第63页 |
| 2.2 主要仪器与试剂 | 第63页 |
| 2.3 试验方法 | 第63-69页 |
| 2.3.1 细胞壁多糖成分提取和测定 | 第63-64页 |
| 2.3.2 木质素含量测定 | 第64-65页 |
| 2.3.3 比色法测定六碳糖和五碳糖 | 第65-66页 |
| 2.3.4 GC-MS测定半纤维素单糖 | 第66页 |
| 2.3.5 纤维素结晶度测定 | 第66页 |
| 2.3.6 生物质稀酸预处理及酶解 | 第66-67页 |
| 2.3.7 生物质稀碱预处理及酶解 | 第67页 |
| 2.3.8 粗纤维素组分单酶酶解提取和测定 | 第67-68页 |
| 2.3.9 扫描电镜观察 | 第68页 |
| 2.3.10 数据统计分析 | 第68-69页 |
| 3 结果分析 | 第69-76页 |
| 3.1 芒草细胞壁组分及降解效率多样性 | 第69-70页 |
| 3.2 芒草半纤维素与降解效率相关性 | 第70-73页 |
| 3.3 木质纤维素酶解机理 | 第73-76页 |
| 3.4 半纤维素组成与纤维素结晶度相关性 | 第76页 |
| 4 讨论 | 第76-77页 |
| 5 论文数据说明 | 第77-78页 |
| 第二章 水稻细胞壁结构与植物抗倒伏特性及生物质酶解产糖效率 | 第78-104页 |
| 摘要 | 第78-80页 |
| Abstract | 第80-82页 |
| 2 实验材料与方法 | 第82-89页 |
| 2.1 大田水稻材料 | 第82页 |
| 2.2 主要仪器与试剂 | 第82页 |
| 2.3 实验方法 | 第82-89页 |
| 2.3.1 细胞壁多糖成分提取和测定 | 第82-83页 |
| 2.3.2 木质素含量测定 | 第83页 |
| 2.3.3 HPLC测定木质素单体 | 第83页 |
| 2.3.4 比色法测定六碳糖和五碳糖 | 第83页 |
| 2.3.5 GC-MS测定半纤维素单糖 | 第83-84页 |
| 2.3.6 纤维素结晶度测定 | 第84页 |
| 2.3.7 生物质稀酸稀碱预处理及酶解 | 第84页 |
| 2.3.8 扫描电镜观察 | 第84页 |
| 2.3.9 水稻生物学性状考察 | 第84-85页 |
| 2.3.10 细胞壁相关基因表达分析 | 第85-89页 |
| 2.3.11 数据统计分析 | 第89页 |
| 3 结果分析 | 第89-100页 |
| 3.1 水稻突变体细胞壁和降解效率及倒伏指数的变异性 | 第89-91页 |
| 3.2 水稻突变体细胞壁组分与降解效率和倒伏指数关联分析 | 第91-92页 |
| 3.3 细胞壁结构与降解效率和倒伏指数相关性 | 第92-94页 |
| 3.4 细胞壁三大组分间关联分析 | 第94-95页 |
| 3.5 突变体Osfc17和Osfc30鉴定 | 第95-97页 |
| 3.6 茎秆组织降解原位（in situ）和体外（in vitro）扫描电镜观察 | 第97-99页 |
| 3.7 突变体细胞壁相关基因表达分析 | 第99-100页 |
| 4 讨论 | 第100-103页 |
| 4.1 水稻细胞壁突变体大规模筛选 | 第100-101页 |
| 4.2 水稻细胞壁关键结构因子作用机理模型 | 第101-102页 |
| 4.3 细胞壁关键结构因子遗传改良 | 第102-103页 |
| 4.4 快速检测水稻生物质降解效率新方法 | 第103页 |
| 5.论文数据说明 | 第103-104页 |
| 第三章 Osfc16特异突变体生物学特性与生物质酶解产糖 | 第104-150页 |
| 摘要 | 第104-106页 |
| Abstract | 第106-109页 |
| 2 实验材料、仪器与方法 | 第109-127页 |
| 2.1 材料准备 | 第109页 |
| 2.2 主要仪器及试剂 | 第109页 |
| 2.3 实验方法 | 第109-127页 |
| 2.3.1 水稻材料收集及测定 | 第109-110页 |
| 2.3.2 植株机械强度测定 | 第110页 |
| 2.3.3 Osfc16突变体基因图位克隆 | 第110-112页 |
| 2.3.4 水稻细胞壁组分提取及测定 | 第112页 |
| 2.3.5 细胞壁木质素总量及单体含量测定 | 第112页 |
| 2.3.6 纤维素结晶度（Cr I）测定 | 第112-113页 |
| 2.3.7 纤维素聚合度（DP）测定 | 第113-114页 |
| 2.3.8 生物质稀酸稀碱预处理及酶解 | 第114页 |
| 2.3.9 乙醇发酵及测定 | 第114页 |
| 2.3.10 扫描电镜观察 | 第114-115页 |
| 2.3.11 透射电镜观察 | 第115页 |
| 2.3.12 荧光增白剂（Cacoflour）和除草剂CGA处理水稻幼苗 | 第115页 |
| 2.3.13 水稻总膜蛋白的提取 | 第115-116页 |
| 2.3.14 纤维素体外合成 | 第116-117页 |
| 2.3.15 免疫共沉淀（Co-IP） | 第117-118页 |
| 2.3.16 SDS-PAGE胶制备 | 第118-119页 |
| 2.3.17 Western Blot | 第119-120页 |
| 2.3.18 水稻芯片表达分析 | 第120-121页 |
| 2.3.19 Osfc16转基因互补载体构建 | 第121-125页 |
| 2.3.20 水稻成熟胚愈伤组织的诱导、分化、生根及移栽方法 | 第125-127页 |
| 3 结果分析 | 第127-148页 |
| 3.1 Osfc16和Osfc80突变体鉴定 | 第127-131页 |
| 3.2 Osfc16和Osfc80表型观测 | 第131-133页 |
| 3.3 Osfc16细胞壁结构分析 | 第133-135页 |
| 3.4 Osfc16纤维素结晶度和聚合度测定 | 第135-136页 |
| 3.5 Osfc16生物质降解效率及乙醇产率提高 | 第136-138页 |
| 3.6 Osfc16纤维素合酶复合体检测 | 第138-141页 |
| 3.7 Osfc16全基因组芯片表达分析 | 第141-148页 |
| 4 讨论 | 第148-149页 |
| 5.论文数据说明 | 第149-150页 |
| 全文总结与展望 | 第150-152页 |
| 参考文献 | 第152-184页 |
| 附录 | 第184-201页 |
| 附录1 常用试剂配方 | 第184-200页 |
| 附录2 个人简介 | 第200-201页 |
| 攻读博士期间发表的论文 | 第201-203页 |
| 致谢 | 第203-205页 |
