| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第9-17页 |
| 1 aFGF研究概述 | 第9-14页 |
| 1.1 aFGF基本结构 | 第9-11页 |
| 1.2 aFGF的生物学功能 | 第11-12页 |
| 1.3 aFGF受体与信号转导通路 | 第12-14页 |
| 2 aFGF与阿尔茨海默病 ( AD ) | 第14-15页 |
| 2.1 阿尔茨海默病的发病机制与治疗药物 | 第14页 |
| 2.2 aFGF与神经保护 | 第14-15页 |
| 3 课题研究目的 | 第15-16页 |
| 4 技术线路图 | 第16-17页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第17-30页 |
| 1 实验仪器和材料 | 第17-20页 |
| 1.1 主要实验仪器 | 第17-18页 |
| 1.2 实验材料与试剂 | 第18-20页 |
| 2 常用试剂配制 | 第20-24页 |
| 2.1 细胞培养试剂 | 第20-21页 |
| 2.2 MTT储液( 5 mg/mL ) | 第21页 |
| 2.3 LiCL的配制 | 第21-22页 |
| 2.4 WB试剂配制 | 第22-24页 |
| 3 实验方法 | 第24-28页 |
| 3.1 ADDLs制备 | 第24页 |
| 3.2 原代皮质神经元的分离及培养 | 第24-25页 |
| 3.3 细胞免疫荧光染色 | 第25-26页 |
| 3.4 MTT测细胞活力 | 第26页 |
| 3.5 ADDLs诱导原代皮质神经元凋亡模型建立 | 第26页 |
| 3.6 TAT-aFGF拮抗ADDLs诱导的原代皮质神经元凋亡 | 第26-27页 |
| 3.7 细胞总蛋白抽提 | 第27页 |
| 3.8 蛋白含量测定 | 第27-28页 |
| 3.9 Western blotting检测 | 第28页 |
| 4 统计方法 | 第28-30页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第30-48页 |
| 1 AD细胞模型造模条件的优化 | 第30-32页 |
| 1.1 ADDLs的制备与鉴定 | 第30页 |
| 1.2 ADDLs造模浓度的摸索 | 第30-32页 |
| 2 TAT-aFGF和aFGF对神经元突起保护作用的验证 | 第32-36页 |
| 2.1 TAT-aFGF作用浓度的摸索 | 第32-34页 |
| 2.2 TAT-aFGF和aFGF促进突触相关蛋白的表达 | 第34-36页 |
| 3 TAT-aFGF和aFGF调控CREB磷酸化的信号通路研究 | 第36-48页 |
| 3.1 PI3K/AKT-GSK3β-CREB信号通路的验证 | 第37-43页 |
| 3.2 ERK1/2-CREB信号通路的验证 | 第43-48页 |
| 第四章 讨论 | 第48-52页 |
| 1 Aβ与ADDLs诱导的神经元损伤模型（AD体外细胞模型） | 第48-49页 |
| 2 aFGF对突触损伤的保护作用及分子机制 | 第49-52页 |
| 2.1 CREB磷酸化在突触生长中的作用 | 第49-50页 |
| 2.2 aFGF促进CREB磷酸化的信号通路研究 | 第50-52页 |
| 第五章 结论 | 第52-53页 |
| 创新与展望 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-61页 |
| 英文缩略词表 | 第61-62页 |
| 攻读硕士期间发表论文 | 第62-63页 |
| 课题基金 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
