| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 第1章 绪论 | 第13-20页 |
| 1.1 课题背景及意义 | 第13页 |
| 1.2 薯蓣皂苷元研究现状 | 第13-16页 |
| 1.2.1 薯蓣皂苷元性质 | 第13-14页 |
| 1.2.2 薯蓣皂苷元提取工艺研究 | 第14-16页 |
| 1.2.2.1 直接酸解法 | 第14页 |
| 1.2.2.2 预发酵法 | 第14页 |
| 1.2.2.3 微生物发酵 | 第14-15页 |
| 1.2.2.4 超临界水解法 | 第15页 |
| 1.2.2.5 酶解法 | 第15-16页 |
| 1.3 5-羟甲基糠醛研究现状 | 第16-19页 |
| 1.3.1 5-羟甲基糠醛理化性质 | 第16页 |
| 1.3.2 5-羟甲基糠醛的应用 | 第16页 |
| 1.3.3 果糖制备 5-羟甲基糠醛的研究进展 | 第16-18页 |
| 1.3.3.1 质子酸催化剂 | 第17页 |
| 1.3.3.2 固体酸催化剂 | 第17页 |
| 1.3.3.3 金属卤化物催化剂 | 第17页 |
| 1.3.3.4 离子液催化剂 | 第17-18页 |
| 1.3.4 葡萄糖催化转化为 5-HMF的研究现状 | 第18-19页 |
| 1.3.4.1 质子酸催化剂 | 第18页 |
| 1.3.4.2 固体酸催化剂 | 第18-19页 |
| 1.3.4.3 金属卤化物催化剂和离子液体催化剂 | 第19页 |
| 1.4 课题研究的主要内容 | 第19-20页 |
| 第2章 薯蓣皂苷元提取工艺的研究 | 第20-38页 |
| 2.1 引言 | 第20页 |
| 2.2 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.3 直接酸水解法提取薯蓣皂苷元工艺研究 | 第21-25页 |
| 2.3.1 直接酸水解法提取工艺研究 | 第21页 |
| 2.3.1.1 直接酸水解法工艺流程图 | 第21页 |
| 2.3.1.2 直接酸水解法提取过程 | 第21页 |
| 2.3.2 薯蓣皂苷元高效液相色谱测定 | 第21-23页 |
| 2.3.2.1 标准曲线的绘制 | 第21-22页 |
| 2.3.2.2 标品与样品高效液相色谱图 | 第22-23页 |
| 2.3.3 直接酸水解法单因素试验 | 第23-25页 |
| 2.3.3.1 硫酸浓度对薯蓣皂苷元收率的影响 | 第23页 |
| 2.3.3.2 酸解温度对薯蓣皂苷元收率的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.3.3 酸解时间对薯蓣皂苷元收率的影响 | 第24页 |
| 2.3.3.4 固液比对薯蓣皂苷元收率的影响 | 第24页 |
| 2.3.3.5 重复试验 | 第24-25页 |
| 2.3.4 讨论 | 第25页 |
| 2.4 生物酶催化水解法提取薯蓣皂苷元工艺研究 | 第25-36页 |
| 2.4.1 实验方法 | 第25-26页 |
| 2.4.1.1 酶催化水解法提取薯蓣皂苷元工艺流程图 | 第25-26页 |
| 2.4.1.2 单一淀粉酶 /纤维素酶 /糖化酶催化水解法提取薯蓣皂苷元工艺过程 | 第26页 |
| 2.4.1.3 复合酶催化水解法提取薯蓣皂苷元工艺过程 | 第26页 |
| 2.4.2 还原糖含量测定 | 第26-27页 |
| 2.4.2.1 溶液配制 | 第26页 |
| 2.4.2.2 最大吸收峰的确定 | 第26-27页 |
| 2.4.2.3 标准曲线的绘制 | 第27页 |
| 2.4.3 单一淀粉酶 /纤维素酶 /糖化酶催化水解法提取薯蓣皂苷元实验结果与分析 | 第27-29页 |
| 2.4.3.1 淀粉酶对薯蓣皂苷元收率的影响 | 第27-28页 |
| 2.4.3.2 纤维素酶对薯蓣皂苷元收率的影响 | 第28-29页 |
| 2.4.3.3 糖化酶对薯蓣皂苷元收率的影响 | 第29页 |
| 2.4.4 复合酶催化水解法提取薯蓣皂苷元实验结果与分析 | 第29-36页 |
| 2.4.4.1 复合酶配比对薯蓣皂苷元收率的影响 | 第29-30页 |
| 2.4.4.2 复合酶添加量对薯蓣皂苷元产率的影响 | 第30页 |
| 2.4.4.3 酶解温度对薯蓣皂苷元产率的影响 | 第30-31页 |
| 2.4.4.4 酶解pH对薯蓣皂苷元产率的影响 | 第31页 |
| 2.4.4.5 酶解时间对薯蓣皂苷元产率的影响 | 第31-32页 |
| 2.4.4.6 浓硫酸添加量对薯蓣皂苷元产率的影响 | 第32-33页 |
| 2.4.4.7 酸解温度对薯蓣皂苷元产率的影响 | 第33页 |
| 2.4.4.8 酸解时间对薯蓣皂苷元收率的影响 | 第33-34页 |
| 2.4.4.9 提取料液比对薯蓣皂苷元收率的影响 | 第34页 |
| 2.4.4.10 提取次数比对薯蓣皂苷元收率的影响 | 第34-35页 |
| 2.4.4.11 正交实验 | 第35-36页 |
| 2.4.4.12 验证实验 | 第36页 |
| 2.5 本章小结 | 第36-38页 |
| 第3章 薯蓣皂苷元抗自由基活性的研究 | 第38-48页 |
| 3.1 引言 | 第38-39页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第39页 |
| 3.3 薯蓣皂苷元电化学行为的研究 | 第39-42页 |
| 3.3.1 碳纳米管 /玻碳电极的制备 | 第39-40页 |
| 3.3.2 薯蓣皂苷元电化学测定条件的筛选 | 第40-42页 |
| 3.3.2.1 缓冲溶液体系的选择 | 第40页 |
| 3.3.2.3 扫描速率的确定 | 第40-41页 |
| 3.3.2.4 线性范围、检出限、稳定性 | 第41-42页 |
| 3.3.2.5 样品加样回收率的测定 | 第42页 |
| 3.4 薯蓣皂苷元清除自由基的活性研究 | 第42-43页 |
| 3.4.1 DPPH自由基清除实验与清除率的测定 | 第42-43页 |
| 3.4.2 羟基自由基清除实验与清除率的测定 | 第43页 |
| 3.4.3 超氧自由基清除实验与清除率的测定 | 第43页 |
| 3.5 实验结果 | 第43-47页 |
| 3.5.1 薯蓣皂苷元对DPPH自由基的清除作用 | 第43-44页 |
| 3.5.2 薯蓣皂苷元对羟基自由基的清除作用 | 第44-45页 |
| 3.5.3 薯蓣皂苷元对超氧自由基的清除作用 | 第45-47页 |
| 3.6 本章小结 | 第47-48页 |
| 第4章 5-羟甲基糠醛合成工艺的研究 | 第48-61页 |
| 4.1 引言 | 第48-49页 |
| 4.2 实验材料 | 第49页 |
| 4.3 实验方法 | 第49-51页 |
| 4.3.1 催化剂的制备 | 第49-50页 |
| 4.3.2 CrCl_3/PVP纳米纤维催化剂表征 | 第50页 |
| 4.3.3 CrCl_3/PVP纳米纤维催化剂催化葡萄糖转化为HMF的研究 | 第50页 |
| 4.3.4 CrCl_3/PVP纳米纤维催化剂催化果葡糖浆转化为HMF的研究 | 第50页 |
| 4.3.5 HMF含量的测定 | 第50-51页 |
| 4.3.5.1 最大吸收峰的确定 | 第51页 |
| 4.3.5.2 HMF标准曲线的绘制 | 第51页 |
| 4.4 CrCl_3/PVP纳米纤维催化剂表征结果分析 | 第51-53页 |
| 4.4.1 CrCl_3/PVP纳米纤维热失重分析 | 第51-52页 |
| 4.4.2 CrCl_3/PVP纳米纤维红外光谱分析 | 第52-53页 |
| 4.4.3 CrCl_3/PVP纳米纤维的形貌 | 第53页 |
| 4.5 催化葡萄糖制备HMF的结果与分析 | 第53-56页 |
| 4.5.1 不同温度煅烧的CrCl_3/PVP纳米纤维对制备 5-HMF的影响 | 第53-54页 |
| 4.5.2 催化剂种类及添加量对葡萄糖制备 5-HMF的影响 | 第54-55页 |
| 4.5.3 反应温度对葡萄糖制备 5-HMF的影响 | 第55页 |
| 4.5.4 反应时间对葡萄糖制备 5-HMF的影响 | 第55-56页 |
| 4.5.5 催化葡萄糖转化为HMF的验证试验 | 第56页 |
| 4.6 催化果葡糖浆制备 5-HMF的实验结果与分析 | 第56-60页 |
| 4.6.1 离子液用量对果葡糖浆制备HMF的影响 | 第57页 |
| 4.6.2 反应时间对果葡糖浆制备HMF的影响 | 第57-58页 |
| 4.6.3 反应温度对果葡糖浆制备HMF的影响 | 第58页 |
| 4.6.4 催化剂添加量对果葡糖浆制备HMF的影响 | 第58页 |
| 4.6.5 正交实验 | 第58-60页 |
| 4.6.6 验证实验 | 第60页 |
| 4.7 本章小结 | 第60-61页 |
| 结论与展望 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 攻读学位期间所发表的学术论文 | 第70页 |
