| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第12-26页 |
| 1.1 应激 | 第12-14页 |
| 1.1.1 应激的概述 | 第12-13页 |
| 1.1.2 应激的分类和特点 | 第13-14页 |
| 1.2 产前应激 | 第14-16页 |
| 1.2.1 产前应激 | 第14页 |
| 1.2.2 产前应激与子代海马发育 | 第14-15页 |
| 1.2.3 产前应激与子代抑郁样行为 | 第15-16页 |
| 1.3 产前应激与5-HT系统 | 第16-21页 |
| 1.3.1 5-HT的功能 | 第16-17页 |
| 1.3.2 5-HT1A受体和5-HTT的作用 | 第17-19页 |
| 1.3.3 5-HT系统与HPA轴的交互作用 | 第19-20页 |
| 1.3.4 BDNF与抑郁 | 第20页 |
| 1.3.5 BDNF与5-HT系统的交互作用 | 第20-21页 |
| 1.4 乙酰化水平改变能引起抑郁 | 第21-26页 |
| 1.4.1 乙酰化机制 | 第21-23页 |
| 1.4.1.1 乙酰化的概念 | 第21-22页 |
| 1.4.1.2 HDAC4对乙酰化的调控 | 第22-23页 |
| 1.4.2 应激引起乙酰化水平的改变和疾病 | 第23-24页 |
| 1.4.3 产前应激、乙酰化与5-HT系统 | 第24-26页 |
| 第二章 PS引起子代大鼠抑郁样行为 | 第26-32页 |
| 2.1 实验仪器及材料 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-28页 |
| 2.2.1 动物分组 | 第26-27页 |
| 2.2.2 PS模型的建立 | 第27页 |
| 2.2.3 糖水偏好实验 | 第27页 |
| 2.2.4 高架十字迷宫 | 第27-28页 |
| 2.2.5 强迫游泳实验 | 第28页 |
| 2.3 统计学分析 | 第28页 |
| 2.4 结果 | 第28-32页 |
| 2.4.1 PS引起一月龄子代雄鼠在糖水偏好实验中的抑郁样行为 | 第28-29页 |
| 2.4.2 PS引起子鼠在高架十字迷宫实验中的焦虑样行为 | 第29-30页 |
| 2.4.3 PS引起子鼠强迫游泳实验中抑郁样行为 | 第30-32页 |
| 第三章 PS对子代雄鼠海马HDAC4基因表达的影响 | 第32-38页 |
| 3.1 实验材料 | 第32-34页 |
| 3.1.1 主要仪器和试剂 | 第32-33页 |
| 3.1.2 引物序列 | 第33页 |
| 3.1.3 溶液配制 | 第33-34页 |
| 3.2 实验原理和实验方法 | 第34-37页 |
| 3.2.1 实验原理 | 第34页 |
| 3.2.2 组织提取 | 第34页 |
| 3.2.3 海马总RNA的提取 | 第34-35页 |
| 3.2.4 反转录 | 第35-36页 |
| 3.2.5 实时定量PCR(RT-PCR) | 第36页 |
| 3.2.6 目的基因和管家基因(内参)相对表达量的计算 | 第36-37页 |
| 3.3 统计学分析 | 第37页 |
| 3.4 实验结果 | 第37-38页 |
| 第四章 产前应激对子鼠海马5-HT1A、5-HTT和BDNF基因启动子区域乙酰化水平的影响 | 第38-51页 |
| 4.1 实验材料 | 第38-40页 |
| 4.1.1 主要仪器和试剂 | 第38-39页 |
| 4.1.2 各基因启动子区域引物序列 | 第39-40页 |
| 4.1.3 试剂配制 | 第40页 |
| 4.2 实验原理和方法 | 第40-45页 |
| 4.2.1 染色质免疫共沉淀(CHIP)原理 | 第40-41页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第41-45页 |
| 4.2.2.1 组织提取 | 第41页 |
| 4.2.2.2 优化超声条件 | 第41-42页 |
| 4.2.2.3 免疫沉淀反应 | 第42-43页 |
| 4.2.2.4 RTPCR | 第43-45页 |
| 4.2.3 注意事项 | 第45页 |
| 4.2.4 实验组与对照组目的片段相对表达量的计算 | 第45页 |
| 4.3 统计学分析 | 第45页 |
| 4.4 实验结果 | 第45-51页 |
| 4.4.1 PS对子鼠海马5-HT1A受体启动子区组蛋白乙酰化修饰的影响 | 第46-47页 |
| 4.4.2 PS对子鼠海马5-HTT启动子区组蛋白乙酰化修饰的影响 | 第47-49页 |
| 4.4.3 PS对子鼠海马BDNF启动子区组蛋白乙酰化修饰的影响 | 第49-51页 |
| 第五章 PS对子代雄鼠海马5-HT1A受体、5-HTT和BDNF基因表达的影响 | 第51-55页 |
| 5.1 实验材料 | 第51页 |
| 5.1.1 主要仪器和试剂 | 第51页 |
| 5.1.2 引物序列 | 第51页 |
| 5.1.3 溶液配制 | 第51页 |
| 5.2 实验方法 | 第51-52页 |
| 5.2.1 组织提取 | 第51页 |
| 5.2.2 海马总RNA的提取 | 第51页 |
| 5.2.3 反转录 | 第51-52页 |
| 5.2.4 RT-PCR | 第52页 |
| 5.3 统计学分析 | 第52页 |
| 5.4 实验结果 | 第52-55页 |
| 5.4.1 PS引起子代大鼠海马5-HT1A受体表达的变化 | 第52-53页 |
| 5.4.2 PS对子代大鼠海马5-HTT表达的影响 | 第53页 |
| 5.4.3 PS对子代大鼠海马BDNF基因表达的影响 | 第53-55页 |
| 第六章 讨论 | 第55-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-69页 |
| 攻读硕士期间获得的成果 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
