| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 引言 | 第11-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-23页 |
| 1.1 植物中的糖代谢 | 第12-13页 |
| 1.1.1 植物在低温胁迫下的糖代谢 | 第12-13页 |
| 1.1.2 糖与植物抗冻性 | 第13页 |
| 1.2 非生物胁迫对植物细胞壁的影响 | 第13-18页 |
| 1.2.1 植物细胞壁的结构、组成和功能 | 第13-14页 |
| 1.2.2 植物细胞壁应对非生物胁迫的响应 | 第14-17页 |
| 1.2.2.1 水分亏缺 | 第14-15页 |
| 1.2.2.2 盐胁迫 | 第15-16页 |
| 1.2.2.3 低温胁迫 | 第16页 |
| 1.2.2.4 激素胁迫 | 第16-17页 |
| 1.2.3 细胞壁的完整性控制 | 第17-18页 |
| 1.3 与细胞壁合成相关的酶 | 第18-22页 |
| 1.3.1 糖基转移酶GTs | 第18页 |
| 1.3.2 糖基转移酶的作用 | 第18-19页 |
| 1.3.3 GT8家族 | 第19-22页 |
| 1.3.3.1 GT8家族的分类 | 第19页 |
| 1.3.3.2 GT8家族的功能 | 第19页 |
| 1.3.3.3 GT8家族基因在逆境条件下的表达 | 第19-20页 |
| 1.3.3.4 GATL亚家族的特征和分类 | 第20页 |
| 1.3.3.5 GATL亚家族的定位和功能 | 第20-22页 |
| 1.4 糖基转移酶基因的研究意义和展望 | 第22-23页 |
| 第二章 低温处理对巨桉叶片中糖含量变化的影响 | 第23-28页 |
| 2.1 材料与方法 | 第23-25页 |
| 2.1.1 材料与试验设计 | 第23页 |
| 2.1.2 试剂 | 第23页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第23页 |
| 2.1.4 紫外分光光度计测叶片中可溶性糖、蔗糖、果糖含量 | 第23-24页 |
| 2.1.5 利用Sugar‐Ca测定葡萄糖和阿拉伯糖的含量 | 第24-25页 |
| 2.1.6 利用SB‐C18测定半乳糖和岩藻糖的含量 | 第25页 |
| 2.2 结果与分析 | 第25-27页 |
| 2.2.1 4℃处理不同时间叶片中可溶性糖、蔗糖、果糖含量的变化 | 第25-26页 |
| 2.2.2 不同时间 4℃处理叶片中葡萄糖、阿拉伯糖、半乳糖和岩藻糖含量的变化 | 第26-27页 |
| 2.3 讨论 | 第27-28页 |
| 第三章 巨桉EgrGATLs基因的结构和表达特性分析 | 第28-50页 |
| 3.1 材料与方法 | 第28-32页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第28页 |
| 3.1.2 试剂和仪器 | 第28页 |
| 3.1.3 材料的处理 | 第28页 |
| 3.1.4 巨桉总RNA的提取以及检测 | 第28-30页 |
| 3.1.5 半定量和实时荧光定量RT‐PCR | 第30-32页 |
| 3.1.6 EgrGATL基因家族的组织特异性表达分析 | 第32页 |
| 3.1.7 低温和高温处理 | 第32页 |
| 3.1.8 盐胁迫、ABA、茉莉酸甲酯、干旱和昼夜节律处理 | 第32页 |
| 3.2 结果与分析 | 第32-48页 |
| 3.2.1 EgrGATLs基因序列分析 | 第32-34页 |
| 3.2.2 EgrGATLs基因系统进化分析 | 第34-36页 |
| 3.2.3 巨桉不同器官中EgrGATLs基因的表达分析 | 第36-38页 |
| 3.2.4 巨桉中GATLs基因在非生物胁迫下的表达分析 | 第38-48页 |
| 3.2.4.1 巨桉中GATLs基因在不同低温和高温下的表达分析 | 第38-40页 |
| 3.2.4.2 巨桉中GATLs基因在 4℃处理不同时间的表达分析 | 第40-41页 |
| 3.2.4.3 巨桉中GATLs基因在NaCl处理不同时间的表达分析 | 第41-42页 |
| 3.2.4.4 巨桉中GATLs基因在ABA处理不同时间的表达分析 | 第42-44页 |
| 3.2.4.5 巨桉中GATLs基因在茉莉酸甲酯处理不同时间的表达分析 | 第44-45页 |
| 3.2.4.6 巨桉中GATLs基因在干旱处理不同时间的表达分析 | 第45-46页 |
| 3.2.4.7 巨桉中GATLs基因在昼夜节律下的表达分析 | 第46-48页 |
| 3.3 讨论 | 第48-50页 |
| 第四章 四个巨桉EgrGATLs基因的亚细胞定位 | 第50-60页 |
| 4.1 材料与方法 | 第50-56页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第50页 |
| 4.1.2 主要仪器设备 | 第50页 |
| 4.1.3 巨桉EgrGATLs基因融合sGFP报告基因表达载体的构建 | 第50-55页 |
| 4.1.4 基因枪法转化洋葱表皮细胞 | 第55-56页 |
| 4.2 结果与分析 | 第56-59页 |
| 4.2.1 构建EgrGATLs中的sGFP融合表达载体 | 第56-57页 |
| 4.2.2 EgrGATLs中四个基因亚细胞定位结果 | 第57-59页 |
| 4.3 讨论 | 第59-60页 |
| 第五章 EgrGATL1在拟南芥中的异源转化 | 第60-71页 |
| 5.1 材料与方法 | 第60-65页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第60页 |
| 5.1.2 EgrGATL1和EgrGATL5超表达载体的构建 | 第60-62页 |
| 5.1.3 重组质粒电转农杆菌 | 第62-63页 |
| 5.1.4 农杆菌菌液侵染拟南芥植株 | 第63-64页 |
| 5.1.5 阳性植株的筛选和鉴定 | 第64页 |
| 5.1.6 转基因拟南芥幼苗在零度低温、盐和ABA处理下的表型观察 | 第64-65页 |
| 5.2 结果与分析 | 第65-69页 |
| 5.2.1 EgrGT8家族两个基因 35S超表达载体的构建 | 第65页 |
| 5.2.2 阳性植株的验证 | 第65-66页 |
| 5.2.3 转基因（EgrGATL1）拟南芥的生理实验表型 | 第66-69页 |
| 5.3 讨论 | 第69-71页 |
| 第六章 结论与展望 | 第71-73页 |
| 6.1 主要研究结果 | 第71-72页 |
| 6.2 研究展望 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-82页 |
| 个人简介 | 第82页 |
| 学术交流活动 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
