| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一部分 文献综述 | 第10-24页 |
| 第一章 细胞极性复合物 | 第10-16页 |
| 1.1 Crb复合物 | 第10-13页 |
| 1.1.1 CRB蛋白 | 第10-12页 |
| 1.1.2 PALS1蛋白 | 第12页 |
| 1.1.3 PATJ蛋白 | 第12-13页 |
| 1.2 SCRIB复合物 | 第13-16页 |
| 1.2.1 SCRIB蛋白 | 第14页 |
| 1.2.2 DLG蛋白 | 第14-15页 |
| 1.2.3 LGL蛋白 | 第15-16页 |
| 第二章 PAR6基因研究进展 | 第16-24页 |
| 2.1 PAR6基因的发现 | 第16页 |
| 2.2 PAR6蛋白的结构与功能 | 第16-18页 |
| 2.2.1 PAR6蛋白的结构 | 第16-17页 |
| 2.2.2 PAR6蛋白的功能 | 第17-18页 |
| 2.3 PAR6基因与肿瘤发生的关联 | 第18-19页 |
| 2.4 PAR基因家族主要成员 | 第19-21页 |
| 2.4.1 PAR3的研究进展 | 第19-20页 |
| 2.4.2 PAR1的研究进展 | 第20-21页 |
| 2.4.3 aPKC的研究进展 | 第21页 |
| 2.5 PAR6在生殖细胞中的研究进展 | 第21-24页 |
| 第二部分 试验研究 | 第24-37页 |
| 第三章 猪PARD6A、PARD6B基因真核表达载体的构建 | 第24-30页 |
| 3.1 材料和方法 | 第24-26页 |
| 3.1.1 仪器设备 | 第24页 |
| 3.1.2 实验材料试剂和耗材 | 第24页 |
| 3.1.3 PAR6基因的克隆 | 第24-25页 |
| 3.1.4 PAR6真核表达载体的构建与鉴定 | 第25-26页 |
| 3.1.5 重组载体转染Hela细胞 | 第26页 |
| 3.1.6 重组载体的体外转录 | 第26页 |
| 3.2 试验结果 | 第26-28页 |
| 3.2.1 PAR6基因的克隆 | 第26页 |
| 3.2.2 重组载体的双酶切鉴定 | 第26-28页 |
| 3.2.3 重组载体转染Hela细胞 | 第28页 |
| 3.3 讨论 | 第28-29页 |
| 3.4 小结 | 第29-30页 |
| 第四章 PARD6A、PARD6B蛋白对猪卵母细胞体外成熟的影响 | 第30-37页 |
| 4.1 材料和方法 | 第30-32页 |
| 4.1.1 仪器设备 | 第30页 |
| 4.1.2 实验材料试剂和耗材 | 第30-31页 |
| 4.1.3 猪卵母细胞的收集及培养 | 第31页 |
| 4.1.4 猪卵母细胞的显微注射 | 第31页 |
| 4.1.5 猪卵母细胞的免疫荧光染色 | 第31页 |
| 4.1.6 数据处理 | 第31-32页 |
| 4.2 试验结果 | 第32-35页 |
| 4.2.1 过表达PARD6A不影响第一极体排出率 | 第32页 |
| 4.2.2 过表达PARD6B不影响第一极体排出率 | 第32-33页 |
| 4.2.3 PARD6A蛋白在猪卵母细胞中的定位 | 第33-34页 |
| 4.2.4 显微注射PARD6A单克隆抗体抑制第一极体排出 | 第34-35页 |
| 4.3 讨论 | 第35-36页 |
| 4.4 小结 | 第36-37页 |
| 结论 | 第37页 |
| 本研究的创新点与进一步研究的课题 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |
| 作者简介 | 第46页 |
