| 中文提要 | 第1-6页 |
| Abstracts | 第6-13页 |
| 第一部分 前言 | 第13-15页 |
| 第二部分 材料与方法 | 第15-31页 |
| 1 实验材料 | 第15-21页 |
| ·实验动物 | 第15页 |
| ·主要药品 | 第15页 |
| ·主要仪器和器材 | 第15-16页 |
| ·模型制备和组织提取及 ELISA 试剂盒检测主要仪器和器材 | 第15页 |
| ·免疫荧光主要仪器和器材 | 第15-16页 |
| ·反转录-聚合酶链反应 RT-PCR 主要仪器和器材 | 第16页 |
| ·免疫印迹 Western blot 主要仪器和器材 | 第16页 |
| ·主要试剂 | 第16-21页 |
| ·大鼠 VEGF 酶联免疫试剂盒编号 | 第16页 |
| ·免疫荧光主要试剂与溶液 | 第16-17页 |
| ·反转录-聚合酶链反应 RT-PCR 主要试剂 | 第17-19页 |
| ·免疫印迹 Western blot 主要试剂 | 第19-21页 |
| 2 实验方法 | 第21-31页 |
| ·动物模型的制备方法 | 第21-22页 |
| ·免疫荧光检测各脑区蛋白分布方法 | 第22-25页 |
| ·大鼠脑组织固定及取材 | 第22页 |
| ·石蜡切片制备 | 第22-23页 |
| ·免疫荧光标记实验 | 第23-24页 |
| ·免疫荧光切片检测 | 第24-25页 |
| ·VEGF 酶联免疫试剂盒操作方法 | 第25-26页 |
| ·VEGF 酶联免疫试剂盒检测脑组织裂解液中 VEGF 浓度的原理 | 第25页 |
| ·脑组织裂解液 VEGF 标准曲线测定 | 第25页 |
| ·脑组织裂解液 VEGF 含量测定 | 第25-26页 |
| ·RT-PCR 检检测各脑区蛋白表达方法 | 第26-27页 |
| ·组织内总 RNA 的提取 | 第26页 |
| ·RNA 逆转录合成 cDNA | 第26-27页 |
| ·cDNA PCR 扩增 | 第27页 |
| ·终产物凝胶电泳检测 | 第27页 |
| ·Western blot 检测各脑区蛋白表达方法 | 第27-30页 |
| ·蛋白的提取 | 第27-28页 |
| ·蛋白标准曲线制定及蛋白测定 | 第28页 |
| ·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第28-29页 |
| ·转膜 | 第29页 |
| ·杂交反应 | 第29-30页 |
| ·显影与图像分析 | 第30页 |
| ·统计学方法 | 第30-31页 |
| 第三部分 结果 | 第31-46页 |
| 1 宏观行为学结果 | 第31-35页 |
| ·体质量 | 第31页 |
| ·旷场实验总路径 | 第31-32页 |
| ·大鼠糖水偏好实验 | 第32-33页 |
| ·大鼠攻击行为得分 | 第33-34页 |
| ·大鼠攻击潜伏期 | 第34-35页 |
| 2 免疫荧光检测结果 | 第35-37页 |
| ·额区海马常光定位 | 第35页 |
| ·Flk-1 的分布 | 第35-37页 |
| 3 VEGF 含量及 mRNA 表达 | 第37-41页 |
| ·VEGF 含量 | 第37-39页 |
| ·标准曲线考察 | 第37页 |
| ·各组大鼠不同脑区 VEGF 含量比较 | 第37-39页 |
| ·VEGF mRNA 表达 | 第39-41页 |
| 4 Flk-1 mRNA 和蛋白表达 | 第41-46页 |
| ·Flk-1 mRNA 表达 | 第41-43页 |
| ·Flk-1 蛋白表达结果 | 第43-46页 |
| 第四部分 讨论 | 第46-51页 |
| 1 愤怒大鼠模型的制备与评价 | 第46-48页 |
| 2 实验大鼠研究脑区与 VEGF 受体的选择 | 第48-49页 |
| 3 VEGF 信号转导的神经保护作用及与怒情绪发生的关联性 | 第49-51页 |
| 4 调肝方药白香丹对怒情绪的调节作用 | 第51页 |
| 第五部分 结论 | 第51-52页 |
| 第六部分 参考文献 | 第52-58页 |
| 第七部分 综述 | 第58-65页 |
| 参考文献 | 第62-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 论文著作 | 第66-72页 |
| 详细摘要 | 第72-78页 |
