| 致谢 | 第1-5页 |
| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-42页 |
| 第一节 海洋鱼类资源利用现状 | 第12-15页 |
| ·国内外低值鱼利用现状 | 第12-15页 |
| ·鲐鱼资源利用现状 | 第15页 |
| 第二节 海洋生物活性肽的研究进展 | 第15-32页 |
| ·海洋生物活性肽的分类 | 第16-19页 |
| ·海洋生物活性肽的制备、分离和纯化 | 第19-26页 |
| ·海洋生物活性肽的功能 | 第26-32页 |
| 第三节 抗疲劳活性肽的研究现状 | 第32-40页 |
| ·疲劳的定义 | 第32-33页 |
| ·疲劳的发生机制 | 第33-35页 |
| ·生物活性肽在抗疲劳活性方面的作用机理 | 第35-37页 |
| ·生物活性肽抗疲劳与抗氧化活性的关联 | 第37-40页 |
| 第四节 选题意义与研究内容 | 第40-42页 |
| 第二章 鲐鱼多肽的制备 | 第42-63页 |
| 第一节 鲐鱼基本组成及氨基酸分析 | 第42-45页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第42-43页 |
| 2 实验方法 | 第43页 |
| 3 结果与讨论 | 第43-45页 |
| ·鲐鱼各组织基本成分分析 | 第43-44页 |
| ·鲐鱼蛋白氨基酸组成分析 | 第44-45页 |
| 第二节 鲐鱼多肽制备工艺优化 | 第45-62页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第45-46页 |
| 2 实验方法 | 第46-49页 |
| 3 结果与讨论 | 第49-62页 |
| ·最佳用酶的筛选 | 第49-51页 |
| ·鲐鱼多肽制备的单因素试验 | 第51-55页 |
| ·鲐鱼多肽制备的响应面优化实验 | 第55-62页 |
| 本章结论 | 第62-63页 |
| 第三章 鲐鱼多肽的分离纯化 | 第63-86页 |
| 第一节 鲐鱼多肽的抗氧化活性研究 | 第63-72页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第63-65页 |
| 2 实验方法 | 第65-67页 |
| 3 结果与讨论 | 第67-72页 |
| ·鲐鱼多肽的理化性质 | 第67-68页 |
| ·鲐鱼多肽的分子量分布 | 第68-69页 |
| ·超滤分级分离 | 第69页 |
| ·鲐鱼多肽清除 DPPH 自由基活性 | 第69-70页 |
| ·鲐鱼多肽清除羟自由基活性 | 第70-71页 |
| ·鲐鱼多肽还原能力 | 第71页 |
| ·鲐鱼多肽抗脂质过氧化能力 | 第71-72页 |
| 第二节 鲐鱼多肽的分离纯化 | 第72-77页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第72-73页 |
| 2 实验方法 | 第73-74页 |
| 3 结果与讨论 | 第74-77页 |
| ·SP Sephadex C25 阳离子交换柱层析 | 第74-75页 |
| ·Sephadex G-25 凝胶柱层析 | 第75-76页 |
| ·高效液相色谱鉴定 | 第76-77页 |
| 第三节 鲐鱼多肽的稳定性研究 | 第77-84页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第78-79页 |
| 2 实验方法 | 第79-80页 |
| 3 结果与讨论 | 第80-84页 |
| ·温度对 MPHs 抗氧化活性的影响 | 第80页 |
| ·pH 值对 MPHs 抗氧化活性的影响 | 第80-81页 |
| ·冻融次数值对 MPHs 抗氧化活性的影响 | 第81-82页 |
| ·紫外线对 MPHs 抗氧化活性的影响 | 第82页 |
| ·金属离子对 MPHs 抗氧化活性的影响 | 第82-84页 |
| 本章结论 | 第84-86页 |
| 第四章 鲐鱼多肽的抗疲劳功效评价 | 第86-99页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第87页 |
| 2 实验方法 | 第87-89页 |
| 3 结果与讨论 | 第89-97页 |
| ·MPHs 抗氧化活性 | 第89-90页 |
| ·小鼠体重和脏器指数变化 | 第90-92页 |
| ·小鼠力竭游泳时间测定 | 第92-93页 |
| ·小鼠生理生化指标测定 | 第93-97页 |
| 本章结论 | 第97-99页 |
| 本文结论 | 第99-100页 |
| 创新点 | 第100-101页 |
| 参考文献 | 第101-118页 |
| 附录 | 第118-119页 |
| 个人简介 | 第119页 |
| 博士在读期间发表的论文与申请专利目录 | 第119-120页 |