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重组萨氏海鞘多肽CS5931抗血管生成活性研究

致谢第1-5页
英文缩略词第5-6页
摘要第6-8页
Abstract第8-13页
第一章 引言第13-27页
 第一节 血管生成概述第13-17页
  一、 VEGF-VEGFR 信号途径第15-16页
  二、 血管生成素Ⅰ(Angiopoietin-1,Ang-1) 与 Tie2 信号通路第16-17页
  三、 Delta-like ligand 4 (Dll4) 与 Notch 受体信号通路第17页
 第二节 肿瘤与血管生成第17-21页
  一、 血管生成开关 (TheAngiogenic Switch)第18页
  二、 肿瘤血管的形成第18-19页
  三、 肿瘤血管的结构和功能第19-21页
 第三节 血管生成抑制剂第21-24页
  一、 血管生成抑制剂分类第21-23页
  二、 血管生成抑制剂优缺点第23-24页
 第四节 斑马鱼胚胎模型第24-25页
 第五节 CS5931 概述第25-26页
 第六节 研究内容与目的第26-27页
第二章 重组多肽 CS5931 对 HUVEC 内皮细胞增殖、迁移和管腔形成的影响第27-41页
 第一节 实验材料第27-31页
  一、 重组多肽 CS5931 的制备第27-28页
  二、 CS5931 浓度的 BCA 测定法第28-29页
  三、 人脐静脉内皮细胞 (Human Umbilical Vein Endothelial Cell, HUVEC) 的复苏、传代培养与冻存第29-30页
  四、 实验试剂及仪器第30-31页
 第二节 实验方法第31-34页
  一、 HUVEC 内皮细胞增殖实验 (MTT 法)第31-32页
  二、 PI/Hoechst 33258 细胞染色实验第32页
  三、 HUVEC 内皮细胞迁移实验第32-33页
  四、 HUVEC 内皮细胞管腔形成实验第33-34页
 第三节 实验结果第34-38页
  一、 CS5931 抑制 HUVEC 细胞的增殖第34-36页
  二、 CS5931 诱导 HUVEC 细胞的凋亡第36页
  三、 CS5931 抑制 HUVEC 细胞的迁移第36-37页
  四、 CS5931 抑制 HUVEC 细胞的管腔拟态的形成第37-38页
 第四节 实验讨论第38-41页
第三章 重组多肽 CS5931 对斑马鱼胚胎形态发育和血管生成的影响第41-49页
 第一节 实验材料第41-42页
  一、 重组多肽 CS5931 的制备第41页
  二、 斑马鱼胚胎的获取第41页
  三、 主要实验仪器及试剂第41-42页
 第二节 实验方法第42-44页
  一、 相关溶液的配制第42-43页
  二、 斑马鱼胚胎的药物处理第43页
  三、 计算胚胎存活率并观察 CS5931 对斑马鱼胚胎形态发育的影响第43页
  四、 碱性磷酸酶染色法观察 CS5931 对斑马鱼胚胎肠下静脉 (SIVs) 发育的影响第43-44页
 第三节 实验结果第44-47页
  一、 斑马鱼胚胎存活率与 CS5931 浓度的关系第44-45页
  二、 CS5931 影响斑马鱼胚胎的形态发育第45页
  三、 CS5931 抑制斑马鱼胚胎肠下静脉 (SIVs) 发育第45-47页
 第四节 实验讨论第47-49页
第四章 重组多肽 CS5931 对 HUVEC 的 VEGF 和 MMPs 基因表达的影响第49-64页
 第一节 实验材料第49-51页
  一、 β-actin、VEGF 和 MMPs 引物第49页
  二、 实验试剂及仪器第49-51页
 第二节 实验方法第51-58页
  一、 RT-PCR 检测 VEGF 和 MMPs mRNA 表达量的变化第51-54页
  二、 Western Blotting 检测 VEGF 蛋白分泌量的变化第54-55页
  三、 明胶酶谱检测 MMPs 表达量的变化第55-58页
 第三节 实验结果第58-62页
  一、 重组多肽 CS5931 影响 VEGF 蛋白的表达量第58-60页
  二、 重组多肽 CS5931 影响 MMPs mRNA 的表达量和蛋白的分泌量第60-62页
 第四节 实验讨论第62-64页
第五章 实验结论与创新点第64-66页
 第一节 实验结论第64-65页
 第二节 创新点第65-66页
参考文献第66-74页
个人简历第74-76页
硕士期间发表的学术论文与研究成果第76-77页

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