| 英文缩略词对表 | 第1-10页 |
| 中文摘要 | 第10-15页 |
| 英文摘要 | 第15-22页 |
| 1 前言 | 第22-28页 |
| 2 材料方法 | 第28-51页 |
| ·研究对象 | 第28页 |
| ·主要试剂 | 第28-29页 |
| ·部分试剂的配制 | 第29-33页 |
| ·主要仪器及来源 | 第33-34页 |
| ·实验方法 | 第34-51页 |
| ·TgCtWh3速殖子的复苏、传代与冻存 | 第34-35页 |
| ·TgCtWh6速殖子的获取与保种 | 第35-36页 |
| ·TgCtwh3和TgCtwh6速殖子的收集、纯化和细胞传代 | 第36页 |
| ·TgCtwh3和TgCtwh6速殖子的毒力鉴定 | 第36页 |
| ·Wh3-Mφ和 Wh6-Mφ的获取、培养 | 第36-37页 |
| ·FCM检测Wh3-Mφ/Wh6-Mφ的表面标记 | 第37页 |
| ·上清液细胞因子的检测 | 第37-41页 |
| ·Wh3-Mφ/Wh6-Mφ的RNA提取 | 第41-42页 |
| ·Wh3-Mφ/Wh6-Mφ的RNA逆转录合成cDNA | 第42页 |
| ·荧光定量PCR分析M1/M2和Th1/Th2相关基因转录水平 | 第42-43页 |
| ·L929条件培养基的制备 | 第43-44页 |
| ·BMMφ的制备和培养 | 第44-45页 |
| ·RAW264.7的培养和传代 | 第45页 |
| ·BMMφ或RAW264.7感染TgCtwh3和TgCtwh6速殖子 | 第45-46页 |
| ·蛋白浓度测定 | 第46-47页 |
| ·蛋白印迹 | 第47-49页 |
| ·细胞免疫荧光 | 第49-50页 |
| ·活化的RAW264.7感染速殖子后瑞氏-吉姆萨染色 | 第50-51页 |
| ·数据处理和统计分析 | 第51页 |
| 3 结果 | 第51-62页 |
| ·Chinese 1基因型弓形虫TgCtwh3和TgCtwh6株毒力差异 | 第51-53页 |
| ·TgCtwh3和TgCtwh6感染巨噬细胞的细胞因子表达差异 | 第53-54页 |
| ·TgCtwh3和TgCtwh6下调CD80、CD86和MHCⅡ分子在巨噬细胞上的表达 | 第54页 |
| ·Wh3-Mφ上调PD-L2和CD206，而Wh6-Mφ中等强度表达PD-L1 | 第54-56页 |
| ·Wh6-Mφ产生高水平NO,而Wh3-Mφ高表达Ym1和Arg-1 | 第56-58页 |
| ·M2细胞的高水平的精氨酸酶促进弓形虫的增殖 | 第58-60页 |
| ·TgCtwh3诱导STAT6的磷酸化，而TgCtWh6活化NF-κBp65并促进其核转移 | 第60-62页 |
| 4 讨论 | 第62-65页 |
| 5 结论 | 第65-66页 |
| 主要参考文献 | 第66-72页 |
| 附录 | 第72-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 综述 | 第76-85页 |
| 参考文献 | 第82-85页 |
