| 英文缩略词 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 前言 | 第16-21页 |
| 实验材料 | 第21-27页 |
| 实验方法 | 第27-43页 |
| 一、小鼠大脑中动脉栓塞模型的建立 | 第27-28页 |
| 二、动物分组及取材 | 第28-30页 |
| 1. 静脉注射MSC和Cyclopamine及组织样本取材 | 第28-29页 |
| 2. 脑室内注射重组Shh蛋白及组织样本取材 | 第29-30页 |
| 三、细胞培养 | 第30-31页 |
| 1. MSC的提取及培养 | 第30页 |
| 2. 星形胶质细胞的培养 | 第30页 |
| 3. 小鼠大脑皮层神经元原代培养 | 第30-31页 |
| 4. 模拟体内缺血环境的氧糖剥夺培养神经元及星形胶质细胞 | 第31页 |
| 5. 神经元、星形胶质细胞和MSC共培养 | 第31页 |
| 6. 小鼠大脑皮层原代神经元的不同处理 | 第31页 |
| 四、神经功能缺损评分 | 第31-33页 |
| 1. 改良神经功能缺损评分 | 第31-33页 |
| 2. 足错步试验 | 第33页 |
| 五、组织染色 | 第33-35页 |
| 1. 化学染色 | 第33页 |
| 2. 免疫荧光染色 | 第33-34页 |
| 3. 定量分析 | 第34-35页 |
| 六、电子显微镜检测神经突触密度 | 第35页 |
| 七、Western blotting杂交分析相关蛋白的表达 | 第35-37页 |
| 八、激光显微切割术捕获星形胶质细胞 | 第37-38页 |
| 九、定量Real-time-PCR检测相关基因表达 | 第38-41页 |
| 十、ELISA检测神经元、星形胶质细胞和MSC共培养上清中Shh浓度 | 第41-42页 |
| 十一、间接免疫荧光法检测神经元突起数目与长度 | 第42页 |
| 十二、统计学处理 | 第42-43页 |
| 结果 | 第43-66页 |
| 一、MSC治疗局部脑缺血后神经功能重塑过程中Shh信号途径的作用 | 第43-55页 |
| 1. MSC治疗对MCAo小鼠神经功能缺损的影响 | 第43-44页 |
| 2. MSC治疗对MCAo小鼠神经轴索重塑性和突触重塑性的影响 | 第44-50页 |
| 3. MSC治疗对MCAo小鼠局部缺血脑组织Shh及tPA蛋白表达的影响 | 第50-55页 |
| 二、MSC细胞中S(ih在蛋白水平及基因水平的表达情况 | 第55-57页 |
| 1. MSC治疗对MCAo小鼠局部缺血脑组织局部Shh信号通路蛋白表达影响 | 第55-56页 |
| 2. MSC治疗对MCAo小鼠局部缺血脑组织Shh及tPA基因表达 | 第56-57页 |
| 三、MSC细胞中Shh在蛋白水平及基因水平的表达情况 | 第57-59页 |
| 1. MSC细胞Shh蛋白表达 | 第57-58页 |
| 2. MSC细胞Shh基因表达 | 第58-59页 |
| 四、重组Shh对缺血脑组织及体外培养神经元的作用 | 第59-66页 |
| 1. 重组Shh对MCAo小鼠缺血脑组织神经轴索重塑性的影响 | 第59-62页 |
| 2 脑组织周围组织的tPA和降低PAI-1蛋白的表达 | 第62-63页 |
| 3. 重组Shh对体外培养原代神经元突起数目及长度的影响 | 第63-65页 |
| 4. MSC与星形胶质细胞、原代神经元共培养后上清中Shh分泌的变化 | 第65-66页 |
| 讨论 | 第66-72页 |
| 结论 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 论文综述 | 第79-91页 |
| 参考文献 | 第83-91页 |
| 致谢 | 第91-93页 |
| 个人简历 | 第93-96页 |
| 发表论文 | 第96-105页 |
