海芙蓉化学成分及其活性研究
| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-15页 |
| 第一章 引言 | 第15-16页 |
| 第二章 海芙蓉的研究进展综述 | 第16-22页 |
| ·多糖的研究进展 | 第16-18页 |
| ·黄酮类化合物的研究进展 | 第18-20页 |
| ·海芙蓉化学成分的研究进展 | 第20-22页 |
| 第三章 海芙蓉多糖提取、纯化工艺及其活性研究 | 第22-47页 |
| ·材料与仪器 | 第22页 |
| ·材料 | 第22页 |
| ·仪器 | 第22页 |
| ·海芙蓉多糖提取及纯化工艺 | 第22-26页 |
| ·海芙蓉多糖的提取 | 第22-23页 |
| ·多糖中蛋白质的测定 | 第23页 |
| ·多糖中乙醇的沉淀分离试验 | 第23-24页 |
| ·多糖中的脱蛋白工艺 | 第24-25页 |
| ·多糖中色素的除去 | 第25页 |
| ·DEAE-52纤维素对多糖的纯化 | 第25-26页 |
| ·G-75型葡聚糖凝胶对多糖的纯化 | 第26页 |
| ·响应面法优化微波提取多糖工艺 | 第26-27页 |
| ·微波功率对多糖提取率的影响 | 第26页 |
| ·提取温度对多糖提取率的影响 | 第26-27页 |
| ·提取时间对多糖提取率的影响 | 第27页 |
| ·料液比对多糖提取率的影响 | 第27页 |
| ·多糖纯度鉴定及理化性质检验 | 第27-28页 |
| ·多糖的紫外可见光谱分析 | 第27页 |
| ·HPLC 法纯度鉴定 | 第27-28页 |
| ·冻融实验 | 第28页 |
| ·体外抗氧化实验 | 第28-30页 |
| ·DPPH 法 | 第28页 |
| ·还原力测定 | 第28页 |
| ·清除羟自由基能力的测定 | 第28-29页 |
| ·超氧阴离子自由基的清除能力测定 | 第29-30页 |
| ·结果与分析 | 第30-46页 |
| ·海芙蓉多糖提取因素影响结果 | 第30-34页 |
| ·响应面法分析优化实验结果 | 第34-41页 |
| ·理化性质检验结果 | 第41-43页 |
| ·体外抗氧化实验结果 | 第43-46页 |
| ·小结 | 第46-47页 |
| 第四章 海芙蓉总黄酮提取工艺及其活性研究 | 第47-72页 |
| ·试剂与仪器 | 第47页 |
| ·试剂 | 第47页 |
| ·仪器 | 第47页 |
| ·响应面法优化海芙蓉总黄酮提取工艺 | 第47-49页 |
| ·芦丁标准曲线的绘制 | 第47页 |
| ·测定波长的选择 | 第47页 |
| ·单因素实验 | 第47-48页 |
| ·黄酮类化合物含量测定 | 第48页 |
| ·响应面法试验设计 | 第48-49页 |
| ·总黄酮纯度鉴定 | 第49页 |
| ·紫外光及可见光谱 | 第49页 |
| ·纯化物的高效液相色谱行为 | 第49页 |
| ·总黄酮的定性检识 | 第49-50页 |
| ·盐酸-镁粉反应 | 第49页 |
| ·三氯化铝反应 | 第49页 |
| ·醋酸铅反应 | 第49-50页 |
| ·浓硫酸试验 | 第50页 |
| ·大孔树脂纯化海芙蓉总黄酮工艺的研究 | 第50-53页 |
| ·材料与试剂 | 第50页 |
| ·确定海芙蓉总黄酮的含量 | 第50页 |
| ·筛选树脂的类型 | 第50-51页 |
| ·确定 AB-8 型大孔树脂纯化条件 | 第51-53页 |
| ·大孔树脂分离纯化海芙蓉总黄酮的验证试验 | 第53页 |
| ·体外抗氧化活性研究 | 第53页 |
| ·实验结果 | 第53-70页 |
| ·响应面实验结果 | 第53-61页 |
| ·总黄酮纯度鉴定和定性检识结果 | 第61-63页 |
| ·大孔树脂初步纯化总黄酮结果 | 第63-69页 |
| ·体外抗氧化活性试验的研究结果 | 第69-70页 |
| ·小结 | 第70-72页 |
| 第五章 海芙蓉单体成分的提取分离 | 第72-79页 |
| ·材料与仪器 | 第72页 |
| ·材料 | 第72页 |
| ·仪器 | 第72页 |
| ·实验方法 | 第72-73页 |
| ·实验结果 | 第73-78页 |
| ·小结 | 第78-79页 |
| 第六章 结语与展望 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-84页 |
| 附录 | 第84-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第86页 |
