| 1 前言 | 第1-14页 |
| 1．1 卵母细胞获能 | 第8页 |
| 1．2 哺乳动物卵母细胞减数分裂研究进展 | 第8-11页 |
| 1．2．1 卵母细胞减数分裂阻滞 | 第8-9页 |
| 1．2．2 卵母细胞获得减数分裂能力之前的减数分裂阻滞 | 第9-10页 |
| 1．2．3 卵母细胞获得减数分裂能力之后的减数分裂阻滞 | 第10-11页 |
| 1．2．4 卵泡内维持减数分裂阻滞的物质 | 第11页 |
| 1．2．4．1 卵母细胞成熟抑制因子 | 第11页 |
| 1．2．4．2 cAMP | 第11页 |
| 1．2．4．3 嘌呤及其衍生物 | 第11页 |
| 1．3 卵母细胞减数分裂的恢复 | 第11-12页 |
| 1．3．1 卵母细胞恢复减数分裂的机制 | 第11-12页 |
| 1．3．2 卵母细胞恢复减数分裂后的核成熟进程 | 第12页 |
| 1．4 嘌呤类物质抑制卵母细胞减数分裂恢复的机制 | 第12-13页 |
| 1．5 卵母细胞成熟质量的判断 | 第13页 |
| 1．6 本文主要的研究内容 | 第13-14页 |
| 2 材料与方法 | 第14-17页 |
| 2．1 卵母细胞的获取 | 第14页 |
| 2．2 完整卵泡的剥离 | 第14页 |
| 2．3 卵母细胞直径和透明带厚度的测量 | 第14-15页 |
| 2．4 卵母细胞的培养 | 第15页 |
| 2．5 卵母细胞核成熟的判定 | 第15页 |
| 2．6 成熟的山羊卵母细胞的孤雌活化实验 | 第15-16页 |
| 2．7 高效液相色谱方法测量卵泡液和培养液中的HX浓度 | 第16页 |
| 2．7．1 山羊卵泡液的获取 | 第16页 |
| 2．7．2 HX培养液获取 | 第16页 |
| 2．7．3 HPLC样品的预处理 | 第16页 |
| 2．7．4 HPLC条件 | 第16页 |
| 2．7．5 HPLC测量 | 第16页 |
| 2．8 数据统计分析 | 第16-17页 |
| 3 结果 | 第17-31页 |
| 3．1 山羊卵泡表面直径与实际直径及卵母细胞直径之间的关系 | 第17-18页 |
| 3．1．1 卵泡表面直径与实际直径的相关性 | 第17页 |
| 3．1．2 卵泡直径与卵母细胞直径及透明带厚度之间的关系 | 第17-18页 |
| 3．2 不同直径卵泡卵母细胞体外成熟能力及进程 | 第18-22页 |
| 3．2．1 不同直径卵泡卵母细胞体外成熟0 h和24 h后的核形态 | 第19页 |
| 3．2．2 未达到最大直径的卵母细胞体外核成熟能力 | 第19-21页 |
| 3．2．3 达到最大直径后的卵母细胞体外核成熟能力 | 第21-22页 |
| 3．2．4 直径1．5-2．5mm卵泡的卵母细胞体外核成熟各时相出现的时间 | 第22页 |
| 3．3 HX抑制山羊卵母细胞减数分裂恢复的研究 | 第22-26页 |
| 3．3．1 不同浓度HX对山羊卵母细胞减数分裂的抑制作用 | 第22-23页 |
| 3．3．2 HX对山羊卵母细胞减数分裂抑制作用的持续时间 | 第23页 |
| 3．3．3 HX抑制山羊卵母细胞减数分裂作用的影响因素 | 第23-26页 |
| 3．3．4 解除HX抑制后山羊卵母细胞减数分裂的恢复 | 第26页 |
| 3．4 卵泡液及培养基中HX浓度的测量 | 第26-29页 |
| 3．4．1 HPLC标准曲线的制作 | 第26-27页 |
| 3．4．2 不同直径卵泡液中HX浓度的测量 | 第27页 |
| 3．4．3 不同培养时间后HX-199 HX浓度的测量 | 第27-29页 |
| 3．5 HX对卵母细胞孤雌活化能力的影响 | 第29-31页 |
| 4 讨论 | 第31-37页 |
| 4．1 卵泡表面直径与实际直径的相关性 | 第31页 |
| 4．2 卵泡表面直径与卵母细胞直径以及透明带厚度的关系 | 第31-32页 |
| 4．3 不同直径卵泡中卵母细胞的减数分裂能力 | 第32页 |
| 4．4 关于山羊卵母细胞减数分裂的进程 | 第32-33页 |
| 4．5 山羊卵泡液中的次黄嘌呤 | 第33页 |
| 4．6 HX对山羊卵母细胞减数分裂进程的影响 | 第33-34页 |
| 4．7 关于HX抑制山羊卵母细胞减数分裂的机理 | 第34-35页 |
| 4．8 卵母细胞成熟的质量 | 第35-37页 |
| 5 参考文献 | 第37-44页 |
| 6 附表 | 第44-45页 |
| 7 图版说明 | 第45-46页 |
| 8 图版 | 第46-49页 |
| 9 致谢 | 第49-50页 |
| 10 作者简介 | 第50页 |
