淹水诱导小麦根通气组织形成及皮层细胞程序化死亡的研究
| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 缩略词 | 第11-13页 |
| 1 前言 | 第13-27页 |
| ·通气组织的作用 | 第13-14页 |
| ·通气组织的类型 | 第14-15页 |
| ·裂生通气组织 | 第14页 |
| ·溶生通气组织 | 第14-15页 |
| ·溶生通气组织形成的调控因子 | 第15-18页 |
| ·乙烯 | 第16页 |
| ·Ca~(2+) | 第16-17页 |
| ·活性氧 | 第17-18页 |
| ·通气组织形成过程中PCD的启动及执行 | 第18-21页 |
| ·环境胁迫信号的感受 | 第18-19页 |
| ·信号传递及可逆磷酸化 | 第19-20页 |
| ·细胞的降解 | 第20-21页 |
| ·PCD的超微结构特征 | 第21-25页 |
| ·动物细胞PCD超微结构特征 | 第21-22页 |
| ·植物细胞PCD超微结构特征 | 第22页 |
| ·通气组织形成过程中PCD超微结构特征 | 第22-25页 |
| ·细胞质 | 第22-23页 |
| ·液泡 | 第23-24页 |
| ·线粒体 | 第24页 |
| ·内质网 | 第24页 |
| ·细胞核 | 第24-25页 |
| ·细胞壁 | 第25页 |
| ·小麦在湿害条件下生理和形态变化研究进展 | 第25-27页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第27页 |
| 2 材料与方法 | 第27-30页 |
| ·材料 | 第27-28页 |
| ·方法 | 第28-30页 |
| ·电镜与光镜制样 | 第28-29页 |
| ·TUNEL制样 | 第29页 |
| ·酸性磷酸酶(ACP酶)细胞化学定位 | 第29页 |
| ·Ca~(2+)-ATP酶的细胞化学定位 | 第29-30页 |
| ·统计分析 | 第30页 |
| ·根皮层TUNEL阳性细胞核数量百分比 | 第30页 |
| ·根孔积率测量及统计 | 第30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-36页 |
| ·小麦次生根显微结构变化 | 第30-31页 |
| ·淹水处理后根孔积率变化 | 第31-33页 |
| ·皮层细胞中DNA裂解的TUNEL分析 | 第33页 |
| ·皮层中TUNEL阳性细胞核数量百分比 | 第33-34页 |
| ·皮层细胞超微结构变化 | 第34-35页 |
| ·淹水后皮层细胞中ACP酶的分布 | 第35页 |
| ·淹水后皮层细胞中Ca~(2+)-ATP酶的分布 | 第35-36页 |
| 4 讨论 | 第36-44页 |
| ·小麦次生根在淹水条件下通气组织的形成 | 第36-37页 |
| ·通气组织形成过程及方式 | 第36-37页 |
| ·通气组织形成与耐湿能力的关系 | 第37页 |
| ·淹水条件下小麦次生根皮层细胞DNA裂解情况 | 第37-38页 |
| ·淹水诱导小麦根皮层细胞PCD的特征 | 第38-42页 |
| ·ACP酶与皮层细胞PCD的关系 | 第42页 |
| ·Ca~(2+)-ATP酶与皮层细胞PCD的关系 | 第42-43页 |
| ·本研究的创新点以及深入研究的可能研究方向 | 第43-44页 |
| ·本研究创新点 | 第43页 |
| ·深入研究的可能方向 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 附录 | 第55-56页 |
| 论文图版 | 第56-75页 |
