| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-12页 |
| 第一章 综述 | 第12-31页 |
| ·引言 | 第12-13页 |
| ·主要的手性分离方法 | 第13-15页 |
| ·结晶拆分法 | 第13页 |
| ·直接结晶拆分法 | 第13页 |
| ·诱导结晶法 | 第13页 |
| ·化学拆分法 | 第13页 |
| ·酶拆分法 | 第13-14页 |
| ·膜拆分法 | 第14页 |
| ·色谱拆分法 | 第14-15页 |
| ·毛细管电泳法(Capilliary Elecrtophoresis, CE) | 第14页 |
| ·气相色谱法(Gas Chromatography, GC) | 第14-15页 |
| ·薄层色谱法(Thin Layer Chromatography, TLC) | 第15页 |
| ·超临界流体色谱法(Supercritical Fluid Chromatography, SFC) | 第15页 |
| ·高效液相色谱法(High-performance Liquid Chromatography, HPLC) | 第15页 |
| ·HPLC 手性分离方法的研究与应用 | 第15-23页 |
| ·手性衍生化法 | 第16-18页 |
| ·异硫氰酸酯（ITC）及异氰酸酯类（IC） | 第16-17页 |
| ·萘衍生物类 | 第17页 |
| ·酰氯或磺酰氯衍生物类 | 第17页 |
| ·光学活性氨基酸类 | 第17-18页 |
| ·其它手性衍生试剂 | 第18页 |
| ·手性流动相法 | 第18-19页 |
| ·配体交换型手性添加剂 | 第18页 |
| ·手性离子型络合剂 | 第18-19页 |
| ·基于手性包合机理的添加剂 | 第19页 |
| ·手性诱导吸附型 | 第19页 |
| ·手性固定相法 | 第19-21页 |
| ·蛋白质手性固定相 | 第19-20页 |
| ·高聚物手性固定相 | 第20页 |
| ·空穴型手性固定相 | 第20页 |
| ·Pirkle 型手性固定相 | 第20-21页 |
| ·配体交换手性固定相 | 第21页 |
| ·在生物样品中生物活性物质分析的应用 | 第21-23页 |
| ·手性氨基酸和生物胺分析 | 第21-22页 |
| ·蛋白质分析 | 第22页 |
| ·肽的分离及序列分析 | 第22页 |
| ·核苷和核苷酸分析 | 第22-23页 |
| ·本文的主要研究工作 | 第23-24页 |
| 参考文献 | 第24-31页 |
| 第二章 反相高效液相色谱法测定帕金森模型小鼠中脑D-天冬氨酸和D-谷氨酸的含量 | 第31-46页 |
| ·引言 | 第31页 |
| ·实验部分 | 第31-33页 |
| ·仪器与试剂 | 第31页 |
| ·溶液的配制 | 第31-32页 |
| ·PD 模型小鼠的分组与制作 | 第32页 |
| ·中脑组织预处理 | 第32页 |
| ·衍生方法 | 第32页 |
| ·色谱条件 | 第32-33页 |
| ·分离度的计算 | 第33页 |
| ·结果与讨论 | 第33-42页 |
| ·行为学观察 | 第33页 |
| ·色谱条件的优化 | 第33-37页 |
| ·荧光检测激发和发射波长的确定 | 第33-34页 |
| ·流动相添加剂的选择 | 第34页 |
| ·流动相添加剂浓度对手性分离的影响 | 第34页 |
| ·有机洗脱溶剂的选择 | 第34页 |
| ·洗脱程序的选择 | 第34-35页 |
| ·流速对手性分离的影响 | 第35-36页 |
| ·柱温对手性分离的影响 | 第36页 |
| ·最佳色谱条件的确定 | 第36-37页 |
| ·衍生条件的优化 | 第37-39页 |
| ·介质pH 对衍生反应的影响 | 第37页 |
| ·IBLC 和OPA 的摩尔比对衍生反应的影响 | 第37-38页 |
| ·衍生试剂OPA 与氨基酸的摩尔比对衍生反应的影响 | 第38页 |
| ·反应时间对衍生反应的影响 | 第38-39页 |
| ·保留时间及峰面积重现性试验 | 第39页 |
| ·工作曲线和检出限 | 第39-40页 |
| ·样品分析 | 第40-42页 |
| ·样品中D-Asp、D-Glu 峰位的确定 | 第40-41页 |
| ·回收率的测定 | 第41页 |
| ·样品测定 | 第41页 |
| ·D-Asp、D-Glu 与PD 的相关性分析 | 第41-42页 |
| ·结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-46页 |
| 第三章 反相高效液相色谱法测定帕金森模型小鼠脑组织中D-丝氨酸的含量 | 第46-57页 |
| ·引言 | 第46页 |
| ·实验部分 | 第46-48页 |
| ·仪器与试剂 | 第46-47页 |
| ·溶液的配制 | 第47页 |
| ·PD 模型小鼠的分组与制作 | 第47页 |
| ·脑组织预处理 | 第47页 |
| ·衍生方法 | 第47页 |
| ·色谱条件 | 第47-48页 |
| ·结果与讨论 | 第48-54页 |
| ·色谱条件的优化 | 第48-51页 |
| ·荧光检测激发和发射波长的确定 | 第48页 |
| ·色谱柱的选择 | 第48页 |
| ·流动相添加剂的优化 | 第48-49页 |
| ·洗脱体系的确定 | 第49-50页 |
| ·流速对手性分离的影响 | 第50页 |
| ·柱温对手性分离的影响 | 第50页 |
| ·最佳色谱条件的确定 | 第50-51页 |
| ·日内精密度和日间精密度试验 | 第51页 |
| ·工作曲线和检出限 | 第51-52页 |
| ·样品分析 | 第52-54页 |
| ·样品中D-Ser 峰位的确定 | 第52-53页 |
| ·回收率的测定 | 第53页 |
| ·样品测定 | 第53页 |
| ·D-Ser 与PD 的相关性分析 | 第53-54页 |
| ·结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-57页 |
| 第四章 反相高效液相色谱法测定蜜蜂脑组织中(R)-鱆胺的含量 | 第57-69页 |
| ·引言 | 第57页 |
| ·实验部分 | 第57-59页 |
| ·仪器与试剂 | 第57-58页 |
| ·(R)-OA 的制备及其旋光度测定 | 第58页 |
| ·溶液的配制 | 第58页 |
| ·蜜蜂脑组织样品预处理 | 第58页 |
| ·衍生方法 | 第58页 |
| ·色谱条件 | 第58-59页 |
| ·结果与讨论 | 第59-66页 |
| ·色谱条件的优化 | 第59-61页 |
| ·荧光检测激发和发射波长的选择 | 第59页 |
| ·流动相添加剂的优化 | 第59页 |
| ·洗脱体系的确定 | 第59-60页 |
| ·流速对手性分离的影响 | 第60页 |
| ·柱温对手性分离的影响 | 第60页 |
| ·最佳色谱条件的确定 | 第60-61页 |
| ·(R)-OA 的确定 | 第61-62页 |
| ·衍生条件的优化 | 第62-64页 |
| ·介质pH 的确定 | 第62页 |
| ·OPA 和NAC 的合并时间对衍生反应的影响 | 第62页 |
| ·OPA 和NAC 的摩尔比对衍生反应的影响 | 第62-63页 |
| ·OPA 和(R)-OA 的摩尔比对衍生反应的影响 | 第63页 |
| ·衍生反应时间 | 第63-64页 |
| ·精密度试验 | 第64页 |
| ·工作曲线和检出限 | 第64页 |
| ·样品分析 | 第64-66页 |
| ·样品中(R)-OA 峰位的确定 | 第64-65页 |
| ·回收率的测定 | 第65页 |
| ·样品测定 | 第65-66页 |
| ·结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-69页 |
| 攻读硕士学位期间发表（或待发表）的论文 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
