摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
引言 | 第10-11页 |
1 文献综述 | 第11-26页 |
·脂质体(囊泡) | 第11-14页 |
·脂质体(囊泡)的组成和结构特点 | 第12-13页 |
·脂质体(囊泡)的分类 | 第13页 |
·脂质体(囊泡)的特性 | 第13-14页 |
·脂质体(囊泡)的制备方法 | 第14页 |
·可作为超分子底物的脂双层囊泡(Lipid bilayer vesicle) | 第14-17页 |
·脂质体(脂双层囊泡)的聚集控制 | 第17-24页 |
·金属离子诱导的囊泡聚集 | 第17-19页 |
·pH诱导的囊泡聚集 | 第19-20页 |
·温度诱导的囊泡聚集 | 第20-21页 |
·DNA诱导的囊泡聚集 | 第21-22页 |
·基于分子识别所引起的囊泡聚集 | 第22-23页 |
·聚合物诱导的囊泡聚集 | 第23-24页 |
·其他因素诱导的囊泡聚集 | 第24页 |
·前景及展望 | 第24-25页 |
·本研究工作的内容及意义 | 第25-26页 |
2 肽脂质N~+C_5Ala2C_(16)和陶瓷型脂质(EtO)_3SiC_3N~+C_5Ala2C_(16)的人工合成 | 第26-36页 |
·引言 | 第26页 |
·实验药品与仪器 | 第26-28页 |
·实验药品 | 第26-27页 |
·实验仪器及器材, | 第27-28页 |
·溶剂的精制 | 第28页 |
·展开剂及洗液的配制 | 第28页 |
·肽脂质N~+C_5Ala2C_(16)合成路线 | 第28-29页 |
·合成步骤 | 第29-33页 |
·合成双十六烷基胺 | 第29-30页 |
·合成BOCAla2C_(16) | 第30-31页 |
·合成BrC_5Ala2C_(16) | 第31-32页 |
·合成N~+C_5Ala2C_(16) | 第32-33页 |
·陶瓷型肽脂质(EtO)_3SiC_3N~+C_5Ala2C_(16)合成路线 | 第33页 |
·合成步骤 | 第33-35页 |
·合成NC_5Ala2C_(16) | 第33-34页 |
·合成(EtO)_3SiC_3N~+C_5Ala2C_(16) | 第34-35页 |
·小结 | 第35-36页 |
3 辅酶Ⅰ诱导肽脂质N~+C_5Ala2C_(16)囊泡聚集性能的研究 | 第36-46页 |
·引言 | 第36页 |
·实验药品与仪器 | 第36-37页 |
·实验药品 | 第36-37页 |
·实验仪器 | 第37页 |
·实验方法 | 第37-39页 |
·主要溶液的配置 | 第37页 |
·肽脂质(N~+C_5Ala2C_(16))囊泡的制备 | 第37-38页 |
·囊泡体系吸光度的测定 | 第38页 |
·电镜观察实验 | 第38页 |
·与囊泡结合的NADH量的测定 | 第38-39页 |
·实验结果与讨论 | 第39-45页 |
·肽脂质(N~+C_5Ala2C_(16))囊泡 | 第39页 |
·丙酮酸钠对囊泡聚集的影响 | 第39-41页 |
·乳酸脱氢酶对囊泡聚集的影响 | 第41页 |
·辅酶Ⅰ诱导肽脂质囊泡聚集/分散体系的构建 | 第41-44页 |
·NADH与囊泡结合量的测定 | 第44-45页 |
·小结 | 第45-46页 |
4 辅酶Ⅰ诱导陶瓷型脂质(EtO)_3SiC_3N~+C_5Ala2C_(16)聚集性能的研究 | 第46-57页 |
·引言 | 第46-47页 |
·实验药品与仪器 | 第47页 |
·实验药品 | 第47页 |
·实验仪器 | 第47页 |
·实验方法 | 第47-50页 |
·主要溶液的配制 | 第47-49页 |
·Cerasome囊泡的制备 | 第49页 |
·原子力显微镜观察实验 | 第49页 |
·Tris缓冲液中NAD~+转变为NADH的测定 | 第49-50页 |
·Cerasome囊泡聚集的测定 | 第50页 |
·实验结果与讨论 | 第50-56页 |
·不同pH值的Tris缓冲液中乳酸加入量对生成NADH量的影响 | 第50-52页 |
·Cerasome囊泡 | 第52页 |
·辅酶Ⅰ诱导Cerasome囊泡的聚集 | 第52-54页 |
·NADH与囊泡结合量的测定 | 第54-55页 |
·肽脂质(N~+C_5Ala2C_(16))囊泡的对比实验 | 第55-56页 |
·小结 | 第56-57页 |
结论 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-63页 |
附录A 核磁图谱 | 第63-69页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第69-70页 |
致谢 | 第70-71页 |