微生物转化法合成天麻素等天然活性成分的研究
| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-26页 |
| ·微生物转化的研究概况 | 第11-12页 |
| ·生物转化 | 第11页 |
| ·微生物转化 | 第11页 |
| ·国内外微生物转化的研究进展 | 第11-12页 |
| ·天然活性成分的微生物转化 | 第12-17页 |
| ·天然活性成分的微生物转化反应类型 | 第12-15页 |
| ·微生物转化在天然活性成分研究方面的应用 | 第15-17页 |
| ·微生物转化的主要方法 | 第17-19页 |
| ·分批培养转化法 | 第17页 |
| ·静息细胞转化法 | 第17-18页 |
| ·应用干燥细胞进行生物转化 | 第18页 |
| ·应用孢子进行生物转化 | 第18页 |
| ·应用渗透细胞进行生物转化 | 第18页 |
| ·应用固定化细胞进行生物转化 | 第18-19页 |
| ·利用酶进行生物转化 | 第19页 |
| ·影响微生物转化的因素 | 第19-22页 |
| ·转化酶原 | 第19页 |
| ·底物 | 第19-20页 |
| ·底物添加方法 | 第20页 |
| ·转化时间 | 第20-21页 |
| ·转化温度 | 第21页 |
| ·转化pH | 第21页 |
| ·酶诱导剂 | 第21-22页 |
| ·酶抑制剂 | 第22页 |
| ·生长调节剂 | 第22页 |
| ·新技术在微生物转化中的应用 | 第22-24页 |
| ·基因工程技术 | 第22-23页 |
| ·核磁共振技术 | 第23页 |
| ·质谱技术 | 第23页 |
| ·萃取法生物转化和有机相生物转化 | 第23页 |
| ·生物反应器的应用 | 第23-24页 |
| ·本文研究目的及内容 | 第24页 |
| ·本文主要创新点 | 第24-26页 |
| 第二章 天麻素的微生物合成 | 第26-63页 |
| ·引言 | 第26-31页 |
| ·天麻素及其前体简介 | 第26-27页 |
| ·天麻素的制备 | 第27-28页 |
| ·天麻素转化菌株的选育 | 第28-31页 |
| ·实验材料 | 第31-33页 |
| ·菌种来源 | 第31-32页 |
| ·主要仪器 | 第32页 |
| ·试剂和主要原料 | 第32-33页 |
| ·培养基 | 第33页 |
| ·实验方法 | 第33-44页 |
| ·菌种的分离纯化 | 第33-34页 |
| ·对羟基苯甲醇的制备 | 第34页 |
| ·薄层层析法(TLC) | 第34页 |
| ·天麻素的高效液相(HPLC)检测 | 第34页 |
| ·天麻素生物合成的转化预试 | 第34-36页 |
| ·天麻素生物合成菌种的筛选 | 第36-38页 |
| ·LN-1生长曲线的测定 | 第38页 |
| ·LN-1转化合成天麻素的条件优化研究 | 第38-39页 |
| ·LN-1转化合成天麻素的扩大实验 | 第39页 |
| ·硅胶柱色谱分纯及结构鉴定 | 第39页 |
| ·天麻素生物合成菌种的诱变育种 | 第39-42页 |
| ·原始菌株及诱变菌株的同工酶谱分析 | 第42-43页 |
| ·LN-B的遗传稳定性测定 | 第43-44页 |
| ·结果与讨论 | 第44-61页 |
| ·菌种的分离纯化结果 | 第44页 |
| ·对羟基苯甲醇的制备结果 | 第44页 |
| ·天麻素生物合成的转化预试结果 | 第44-45页 |
| ·天麻素生物合成菌种的筛选结果 | 第45-47页 |
| ·LN-1生长曲线的测定结果 | 第47-48页 |
| ·LN-1转化合成天麻素的条件优化结果 | 第48-51页 |
| ·LN-1转化合成天麻素的扩大实验结果 | 第51页 |
| ·硅胶柱色谱分纯及结构测定 | 第51-53页 |
| ·天麻素生物合成菌种的诱变育种 | 第53-60页 |
| ·原始菌株及突变株的同工酶谱分析 | 第60-61页 |
| ·LN-B斜面传代稳定性的测定结果 | 第61页 |
| ·本章结论 | 第61-63页 |
| 第三章 红景天苷的微生物合成 | 第63-85页 |
| ·引言 | 第63-70页 |
| ·红景天及红景天苷简介 | 第63-64页 |
| ·红景天苷的分析测定方法 | 第64-66页 |
| ·红景天苷药理作用 | 第66-68页 |
| ·红景天苷的制备 | 第68-69页 |
| ·本实验主要研究内容 | 第69-70页 |
| ·实验材料 | 第70-71页 |
| ·菌种来源 | 第70页 |
| ·试剂和主要原料 | 第70页 |
| ·培养基 | 第70-71页 |
| ·主要仪器 | 第71页 |
| ·实验方法 | 第71-75页 |
| ·菌种活化 | 第71-72页 |
| ·薄层层析法(TLC) | 第72页 |
| ·红景天苷的高效液相(HPLC)检测 | 第72页 |
| ·红景天苷合成菌的筛选 | 第72-73页 |
| ·转化菌复筛 | 第73页 |
| ·红景天苷合成菌生长曲线的测定 | 第73-74页 |
| ·红景天苷合成菌转化条件的优化 | 第74页 |
| ·Z-1的转化扩大试验 | 第74-75页 |
| ·硅胶柱色谱分纯及结构鉴定 | 第75页 |
| ·结果与讨论 | 第75-84页 |
| ·菌种的筛选结果 | 第75-77页 |
| ·Z-1生长曲线的测定结果 | 第77-78页 |
| ·红景天苷合成条件的优化 | 第78-82页 |
| ·硅胶柱色谱分纯及结构测定 | 第82-84页 |
| ·本章结论 | 第84-85页 |
| 第四章 天麻素合成酶的分离纯化及性质研究 | 第85-97页 |
| ·引言 | 第85-86页 |
| ·实验材料 | 第86-87页 |
| ·菌种来源 | 第86页 |
| ·主要仪器 | 第86页 |
| ·试剂和主要原料 | 第86-87页 |
| ·实验方法 | 第87-91页 |
| ·天麻素合成酶的分离活化 | 第87-89页 |
| ·天麻素合成酶的性质研究 | 第89-91页 |
| ·结果与讨论 | 第91-96页 |
| ·硫酸铵沉淀酶蛋白的结果 | 第91页 |
| ·DEAE-Cellulose52层析柱分离结果 | 第91-92页 |
| ·Sepharose CL-6B层析柱的分离 | 第92-93页 |
| ·SDS-PAGE电泳结果 | 第93-94页 |
| ·天麻素合成酶的性质研究 | 第94-96页 |
| ·本章结论 | 第96-97页 |
| 第五章 结论 | 第97-100页 |
| 附录 | 第100-102页 |
| 参考文献 | 第102-112页 |
| 致谢 | 第112-113页 |
| 攻读博士学位期间的科研成果 | 第113-114页 |
