| 一.英文缩略词对照 | 第1-10页 |
| 二.中文摘要 | 第10-13页 |
| 三.英文摘要 | 第13-17页 |
| 四.正文：大鼠胶原性关节炎两型滑膜细胞之间相互关系及白芍总苷的作用 | 第17-62页 |
| 1 前言 | 第17-18页 |
| 2 实验材料 | 第18-21页 |
| ·动物 | 第18页 |
| ·药物 | 第18-19页 |
| ·试剂 | 第19-20页 |
| ·仪器 | 第20-21页 |
| 3 方法 | 第21-28页 |
| ·大鼠CIA模型的制备 | 第21-22页 |
| ·实验分组与给药方案 | 第22页 |
| ·关节肿胀度测定 | 第22页 |
| ·体重的测定 | 第22页 |
| ·血清抗CⅡ抗体的检测 | 第22页 |
| ·关节病理组织学检查 | 第22-23页 |
| ·滑膜细胞超微结构的观察 | 第23页 |
| ·滑膜细胞的分离与培养 | 第23-24页 |
| ·滑膜组织的采集 | 第23页 |
| ·胶原酶-胰蛋白酶消化法 | 第23页 |
| ·组织块移植培养法 | 第23-24页 |
| ·细胞活力检测 | 第24页 |
| ·MLS培养上清液IL-1、TNFα和PGE_2的诱生与测定 | 第24页 |
| ·MLS上清液的制备 | 第24页 |
| ·IL-1活性的测定 | 第24页 |
| ·TNFα和PGE_2含量测定 | 第24页 |
| ·FLS增殖反应的检测 | 第24-25页 |
| ·蛋白质印迹法(Western blot)检测VEGF、bFGF、MMP-1和MMP-3的表达 | 第25-28页 |
| ·FLS样品制备 | 第25页 |
| ·蛋白提取 | 第25页 |
| ·蛋白定量 | 第25-26页 |
| ·配置试剂 | 第25页 |
| ·测定样品中蛋白含量 | 第25-26页 |
| ·Western blot操作步骤 | 第26-28页 |
| ·统计学处理 | 第28页 |
| 4 结果 | 第28-43页 |
| ·TGP对CIA大鼠继发侧关节肿胀度和继发性关节炎的影响 | 第28-29页 |
| ·TGP对CIA大鼠体重的影响 | 第29页 |
| ·TGP对CIA大鼠血清抗CⅡ抗体的影响 | 第29-30页 |
| ·TGP对CIA大鼠关节病理组织学的影响 | 第30-33页 |
| ·TGP对CIA大鼠滑膜细胞超微结构的影响 | 第33-35页 |
| ·TGP对CIA大鼠MLS产生IL-1、TNFα和PGE_2的影响 | 第35页 |
| ·TGP体外用药对CIA大鼠FLS增殖反应的影响 | 第35-36页 |
| ·TGP体内用药后MLS培养上清液对CIA大鼠FLS增殖反应的影响 | 第36-37页 |
| ·TGP体外用药对CIA大鼠FLS中VEGF、bFGF、MMP-1和MMP-3表达的影响 | 第37-40页 |
| ·TGP体内用药后MLS培养上清液对CIA大鼠FLS中VEGF、bFGF、MMP-1和MMP-3表达的影响 | 第40-43页 |
| 5 讨论 | 第43-51页 |
| ·TGP对CIA大鼠继发性炎症反应和关节破坏具有明显抑制作用 | 第43-44页 |
| ·TGP的抗炎和延缓关节破坏作用与其改善滑膜细胞的超微结构和分泌功能有密切关系 | 第44-46页 |
| ·两型滑膜细胞之间的关系在CIA大鼠关节破坏中的作用及TGP的影响 | 第46-51页 |
| 6 小结 | 第51页 |
| 7 本研究的创新点 | 第51-53页 |
| 8 参考文献 | 第53-62页 |
| 五.附录 | 第62-64页 |
| 六.致谢 | 第64-65页 |
| 七.综述：类风湿关节炎外周关节骨质破坏机制的研究进展及药物的治疗靶点 | 第65-82页 |
| 【参考文献】 | 第75-82页 |
