| 目录 | 第1-6页 |
| 缩略词对照表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-8页 |
| 英文摘要 | 第8-9页 |
| 前言 | 第9-11页 |
| 1. 文献综述 | 第11-25页 |
| ·植物雄性不育研究概况 | 第11-17页 |
| ·植物雄性不育类型概述 | 第11-13页 |
| ·核质互作雄性不育 | 第11-12页 |
| ·细胞核雄性(NMS)不育 | 第12-13页 |
| ·植物雄性不育分类的新发展 | 第13页 |
| ·CMS胞质基因的载体 | 第13-17页 |
| ·cpDNA与CMS | 第13页 |
| ·pdDNA与 CMS | 第13-14页 |
| ·mtDNA与 CMS | 第14-16页 |
| ·核基因组对 CMS的影响 | 第16-17页 |
| ·十字花科植物雄性不育研究概况 | 第17-19页 |
| ·ogu CMS胞质雄性不育的研究 | 第17-18页 |
| ·Pol CMS胞质雄性不育的研究 | 第18-19页 |
| ·其它 CMS胞质雄性不育的研究 | 第19页 |
| ·分子遗传标记(Molecular Genetic Markers)研究进展概况 | 第19-22页 |
| ·限制性片段长度多态性(RFLPs) | 第20页 |
| ·微卫星 DNA(Microsatellite DNA) | 第20-21页 |
| ·随机扩增多态 DNA(RAPD) | 第21-22页 |
| ·RAPD技术的原理 | 第21页 |
| ·RAPD技术的特点 | 第21-22页 |
| ·扩增片段长度多态性(AFLP) | 第22页 |
| ·单核苷酸多态性(SNPs) | 第22页 |
| ·RAPD技术在十字花科蔬菜研究中的应用 | 第22-25页 |
| ·遗传图谱的构建 | 第23页 |
| ·基因定位 | 第23-24页 |
| ·育性基因的分子标记 | 第23-24页 |
| ·抗病基因的分子标记 | 第24页 |
| ·品质性状的分子标记 | 第24页 |
| ·其它性状分子标记 | 第24页 |
| ·亲缘关系和遗传多样性研究 | 第24-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-30页 |
| ·材料 | 第25页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第25页 |
| ·主要仪器 | 第25页 |
| ·试剂 | 第25页 |
| ·实验设计与方法 | 第25-30页 |
| ·DNA的提取与检测 | 第25-28页 |
| ·mtDNA的提取方案 | 第25-27页 |
| ·基因组 DNA的提取方案 | 第27-28页 |
| ·DNA的检测 | 第28页 |
| ·DNA的酶解检测 | 第28页 |
| ·RAPD反应体系优化 | 第28-29页 |
| ·PCR程序 | 第29页 |
| ·检测与成像 | 第29页 |
| ·数据分析 | 第29页 |
| ·筛选引物 | 第29页 |
| ·细胞质雄性不育差异条带筛选 | 第29页 |
| ·mtDNA的差异条带 | 第29页 |
| ·gDNA的差异条带 | 第29页 |
| ·orf224基因验证 | 第29-30页 |
| ·PCR引物的设计和合成 | 第29页 |
| ·PCR反应 | 第29页 |
| ·PCR反应产物的纯化 | 第29-30页 |
| ·重组质粒的构建、筛选及鉴定 | 第30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-45页 |
| ·DNA的提取 | 第30-32页 |
| ·mtDNA的提取 | 第30-31页 |
| ·gDNA的提取 | 第31-32页 |
| ·RAPD反应体系优化 | 第32-37页 |
| ·引物的筛选 | 第37-38页 |
| ·细胞质雄性不育差异条带筛选 | 第38-42页 |
| ·不育系及保持系mtDNA的差异条带 | 第38-40页 |
| ·不育性、保持系及 F1代mtDNA的差异条带 | 第40-41页 |
| ·gDNA的差异条带 | 第41-42页 |
| ·orf224基因验证 | 第42-45页 |
| 4. 讨论 | 第45-47页 |
| ·小白菜DNA的提取质量 | 第45-46页 |
| ·小白菜稳定的 RAPD体系的建立 | 第46-47页 |
| ·关于RAPD的重复性和稳定性 | 第47页 |
| ·重组质粒的构建、筛选 | 第47页 |
| 5 结论与展望 | 第47-50页 |
| ·结论 | 第47-48页 |
| ·展望 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-58页 |
| 致谢 | 第58页 |