| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第11-35页 |
| ·立项依据 | 第11-15页 |
| ·植物伤害信号途径 | 第15-22页 |
| ·伤害信号的种类 | 第15-16页 |
| ·伤害反应中的植物激素 | 第16-18页 |
| ·伤害诱导的细胞内变化 | 第18-20页 |
| ·伤害诱导的防御基因 | 第20-21页 |
| ·伤害诱导信号传导模式 | 第21-22页 |
| ·番茄中的系统抗性反应信号途径 | 第22-32页 |
| ·系统素信号传导途径 | 第22-24页 |
| ·茉莉酸(JAs)信号途径 | 第24-29页 |
| ·系统素和茉莉酸在植物系统抗性反应中的相互作用 | 第29-32页 |
| ·茉莉酸信号途径与其他信号途径的交叉(Cross-talk) | 第32-35页 |
| 2 材料与方法 | 第35-49页 |
| ·实验材料 | 第35-37页 |
| ·植物材料和生长条件 | 第35-36页 |
| ·试剂和设备 | 第36-37页 |
| ·实验方法 | 第37-49页 |
| ·实验室常规操作 | 第37页 |
| ·DNA 提取与 Southern 杂交 | 第37-39页 |
| ·RNA 提取与Northern 杂交 | 第39-40页 |
| ·RT-PCR | 第40-41页 |
| ·番茄蛋白酶抑制剂抗体制备 | 第41页 |
| ·番茄中 JA 含量测定 | 第41-42页 |
| ·番茄抗性缺失突变体的筛选 | 第42-45页 |
| ·番茄材料的处理 | 第45-46页 |
| ·番茄系统素/茉莉酸信号途径相关基因的染色体片段定位 | 第46-47页 |
| ·spr6 纯合突变体的分离和遗传分析 | 第47页 |
| ·spr6 的等位性鉴定 | 第47页 |
| ·Spr6 的基因遗传作图 | 第47-48页 |
| ·Spr6 的基因序列分析 | 第48-49页 |
| 3 结果与分析 | 第49-66页 |
| ·番茄抗性缺失突变体筛选体系的改进 | 第49页 |
| ·番茄抗性缺失突变体sp16 的获得 | 第49-51页 |
| ·spr6 的特征特性分析 | 第51-55页 |
| ·spr6 对机械受伤的反应 | 第51-52页 |
| ·spr6 的遗传学分析 | 第52-53页 |
| ·spr6 对外施系统素和茉莉酸的反应 | 第53-54页 |
| ·spr6 的等位性鉴定 | 第54页 |
| ·spr6 中的茉莉酸含量的测定 | 第54-55页 |
| ·Spr6 基因的遗传定位 | 第55-60页 |
| ·Spr6 基因的染色体初步定位 | 第55-56页 |
| ·Spr6 和LeCOI1共定位于IL5-3 | 第56-57页 |
| ·与番茄受伤反应途径相关基因(遗传位点)的染色体定位 | 第57-60页 |
| ·Spr6 与 Jail-1(LeCOI1)是一对等位基因 | 第60-64页 |
| ·Spr6 候选基因的确定 | 第60-61页 |
| ·spr6 突变体是 LeCOI1 单碱基突变所致 | 第61-64页 |
| ·spr6 对外施 JA 的反应具有剂量效应 | 第64-66页 |
| 4 讨论 | 第66-70页 |
| ·茉莉酸介导的植物对昆虫抗性反应途径中的新组分的鉴定 | 第66页 |
| ·spr6 的表型是由 LeCOI1 基因的突变造成 | 第66-68页 |
| ·候选基因法策略便于快速鉴定突变体的基因功能 | 第68-70页 |
| 5 结论 | 第70-72页 |
| 6 参考文献 | 第72-87页 |
| 7 致谢 | 第87-89页 |
| 8 攻读学位期间发表论文情况 | 第89页 |
