| 缩略词表 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 前言 | 第10-26页 |
| 1 植物 PAL研究现状 | 第10-17页 |
| 1．1 RAL分布与定位 | 第10-11页 |
| 1．2 PAL生化性质 | 第11-12页 |
| 1．3 RAL表达的调控方式 | 第12-16页 |
| 1．4 PAL表达的调控机理 | 第16-17页 |
| 2 植物 CHS研究现状 | 第17-24页 |
| 2．1 CHS酶学研究 | 第17-18页 |
| 2．2 CHS分子生物学研究 | 第18-20页 |
| 2．3 CHS表达的调控 | 第20-21页 |
| 2．4 CHS与植物生理代谢 | 第21-24页 |
| 3 PAL、CHS在果树上的研究现状 | 第24页 |
| 4 关于 PAL和 CHS研究的展望及其在果树上的应用前景 | 第24-25页 |
| 5 本研究的目的和意义 | 第25-26页 |
| 材料与方法 | 第26-37页 |
| 1 材料 | 第26页 |
| 2 试验方法 | 第26-37页 |
| 2．1 银杏核酸的提取 | 第26-27页 |
| 2．2 银杏 CHS基因的克隆 | 第27-33页 |
| 2．3 银杏 PAL基因的克隆 | 第33-34页 |
| 2．4 CHS活性测定 | 第34页 |
| 2．5 PAL活性测定 | 第34页 |
| 2．6 黄酮含量测定 | 第34页 |
| 2．7 PAL、CHS半定量 RT-PCR | 第34-36页 |
| 2．8 生物信息学分析与数据统计 | 第36-37页 |
| 结果与分析 | 第37-60页 |
| 1 银杏核酸提取 | 第37-39页 |
| 1．1 银杏 DNA电泳检测 | 第37页 |
| 1．2 银杏 DNA的酶切 | 第37-38页 |
| 1．3 CTAB法提取银杏叶总 RNA电泳结果 | 第38页 |
| 1．4 RNA的紫外吸收值 | 第38-39页 |
| 1．5 银杏cDNA的合成及其质量的检测 | 第39页 |
| 2 银杏 CHS基因的克隆 | 第39-49页 |
| 2．1 银杏 CHS基因的基因组片段的克隆 | 第39-40页 |
| 2．2 利用 TAIL-PCR进行银杏 CHS基因3'末端扩增 | 第40-41页 |
| 2．3 银杏 CHS基因全长cDNA的克隆 | 第41-43页 |
| 2．4 Gbchs核苷酸序列比较分析 | 第43页 |
| 2．5 GbCHS蛋白质序列比较分析 | 第43-45页 |
| 2．6 GbCHS蛋白质的三维结构分析 | 第45-46页 |
| 2．7 CHS Southern blot | 第46-47页 |
| 2．8 植物 CHS基因分子进化分析 | 第47-49页 |
| 3 银杏 PAL基因的克隆 | 第49-56页 |
| 3．1 PAL基因的克隆 | 第49-50页 |
| 3．2 Gbpal序列比较分析 | 第50-51页 |
| 3．3 GbPAL蛋白质序列分析 | 第51-53页 |
| 3．4 RAL Southern blot分析 | 第53页 |
| 3．5 PAL基因分子进化分析 | 第53-56页 |
| 3 银杏叶生长过程中黄酮积累以及 CHS活性、基因表达的关系 | 第56-58页 |
| 4 银杏叶生长过程中黄酮积累以及 PAL活性、基因表达的变化 | 第58-60页 |
| 讨论 | 第60-67页 |
| 1 本研究所涉及的技术方法 | 第60-61页 |
| 1．1 银杏 RNA的提取 | 第60页 |
| 1．2 TAIL-PCR | 第60-61页 |
| 2 银杏 CHS基因与 PAL基因的克隆 | 第61-65页 |
| 2．1 CHS基因的克隆 | 第61-63页 |
| 2．2 PAL基因的克隆 | 第63-65页 |
| 2．3 克隆 CHS基因和 PAL基因的意义 | 第65页 |
| 3 银杏叶 CHS基因表达、PAL基因表达与黄酮的积累 | 第65-67页 |
| 结论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-79页 |
| 附录 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
