| 目录 | 第1-6页 |
| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-13页 |
| 英文摘要 | 第13-19页 |
| 前言 | 第19-21页 |
| 文献回顾 | 第21-34页 |
| 正文 | 第34-77页 |
| 1 采用CD31免疫磁珠改良纯化人眼视网膜微血管内皮细胞与周细胞体外培养 | 第34-44页 |
| ·材料和方法 | 第35-39页 |
| ·主要设备、实验器材、试剂及缓冲液 | 第35-37页 |
| ·主要设备 | 第35页 |
| ·实验器材 | 第35-36页 |
| ·主要试剂 | 第36页 |
| ·实验配制试剂 | 第36-37页 |
| ·实验方法 | 第37-39页 |
| ·结果 | 第39-40页 |
| ·讨论 | 第40-44页 |
| 2 人眼视网膜微血管内皮细胞与周细胞的细胞生物学特点及免疫组化鉴定 | 第44-56页 |
| ·材料和方法 | 第44-49页 |
| ·主要设备、实验器材 | 第44-46页 |
| ·主要设备 | 第44-45页 |
| ·主要试剂 | 第45-46页 |
| ·实验方法 | 第46-49页 |
| ·形态学观察 | 第46页 |
| ·免疫组化 | 第46-47页 |
| ·台盼蓝拒染细胞活力实验 | 第47-48页 |
| ·细胞生长曲线测定 | 第48页 |
| ·细胞冻存与复苏 | 第48-49页 |
| ·结果 | 第49-51页 |
| ·细胞形态学观察结果 | 第49页 |
| ·细胞形态学观察结果 | 第49-50页 |
| ·内皮细胞细胞免疫组织化学结果 | 第50页 |
| ·周细胞细胞免疫组织化学结果 | 第50页 |
| ·人视网膜微血管内皮细胞生长规律 | 第50页 |
| ·人视网膜微血管周细胞生长规律 | 第50页 |
| ·台盼蓝活力拒染率结果 | 第50-51页 |
| ·讨论 | 第51-56页 |
| 3 炎症与缺氧对人眼视网膜微血管内皮细胞与周细胞PDGF-B／PDGFR-β与Ang-1／Tie2表达影响的体外研究 | 第56-77页 |
| ·材料和方法 | 第57-66页 |
| ·主要设备、实验器材、试剂及缓冲液 | 第57-60页 |
| ·主要设备 | 第57页 |
| ·实验器材 | 第57-58页 |
| ·主要试剂 | 第58-60页 |
| ·实验方法 | 第60-66页 |
| ·细胞培养与分组 | 第60页 |
| ·免疫组化、免疫荧光 | 第60-61页 |
| ·Western blot | 第61-63页 |
| ·RT-PCR | 第63-66页 |
| ·结果 | 第66-69页 |
| ·免疫组化、免疫荧光 | 第66-67页 |
| ·常规剂量(100ng/ml)TNF-α组 | 第66页 |
| ·大剂量(2450ng/ml)TNF-α组 | 第66页 |
| ·CoCl_2组 | 第66-67页 |
| ·大规剂量TNF-α与COCl_2联合作用组 | 第67页 |
| ·Western blot分析 | 第67-68页 |
| ·TNF-α常规剂量组 | 第67页 |
| ·TNF-α大规剂量组 | 第67页 |
| ·CoCl_2组 | 第67-68页 |
| ·大规剂量TNF-α与CoCl_2联合作用组 | 第68页 |
| ·RT-PCR半定量分析 | 第68-69页 |
| ·TNF-α常规剂量组 | 第68页 |
| ·COCl_2 | 第68页 |
| ·TNF-α大规剂量组 | 第68-69页 |
| ·大规剂量TNF-α与CoCl_2联合作用组 | 第69页 |
| ·讨论 | 第69-77页 |
| 小结 | 第77-79页 |
| 参考文献 | 第79-95页 |
| 附图 | 第95-106页 |
| 个人简历和研究成果 | 第106-107页 |
| 致谢 | 第107-109页 |
