| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-10页 |
| 第一部分 文献综述 | 第10-15页 |
| 1 生物学研究 | 第10-11页 |
| 2 化学成分 | 第11-12页 |
| 3 药理活性 | 第12-13页 |
| 4 含量测定 | 第13-14页 |
| 5 本研究的目的、意义及主要内容 | 第14-15页 |
| 第二部分 菘蓝愈伤组织和细胞培养 | 第15-33页 |
| 1 材料和方法 | 第15-33页 |
| 1．1 实验材料 | 第15页 |
| 1．1．1 植物材料 | 第15页 |
| 1．1．2 培养基和培养条件 | 第15页 |
| 1．2 研究方法 | 第15页 |
| 1．2．1 菘蓝愈伤组织系统的建立 | 第15-17页 |
| 1．2．2 悬浮培养体系的建立 | 第17页 |
| 2． 结果与讨论 | 第17页 |
| 2．1 菘蓝愈伤组织系统的建立 | 第17页 |
| 2．1．1 愈伤组织诱导条件优化 | 第17-19页 |
| 2．1．2 愈伤组织生长条件优化 | 第19-22页 |
| 2．1．3 愈伤组织的生长周期和次生代谢产物积累的关系 | 第22-23页 |
| 2．2 菘蓝细胞悬浮培养系统的建立 | 第23页 |
| 2．2．1 接种量对悬浮培养细胞生长和次生代谢产物积累的影响 | 第23-25页 |
| 2．2．2 悬浮细胞生长周期中生物量的变化和次生代谢产物的积累 | 第25-26页 |
| 2．2．3 碳源对悬浮培养细胞生长和次生代谢产物积累的影响 | 第26-29页 |
| 2．2．4 氮源对悬浮培养细胞生长和次生代谢产物积累的影响 | 第29-33页 |
| 第三部分 发根农杆菌介导的菘蓝遗传转化系统建立 | 第33-55页 |
| 1 材料和方法 | 第33-35页 |
| 1．1 实验材料 | 第33页 |
| 1．1．1 植物材料 | 第33页 |
| 1．1．2． 发根农杆菌菌种 | 第33页 |
| 1．2 研究方法 | 第33页 |
| 1．2．1 培养基的配制 | 第33页 |
| 1．2．2 发根农杆菌菌种的保藏与活化 | 第33页 |
| 1．2．3 外植体转化 | 第33-34页 |
| 1．2．4 转化毛状根的筛选 | 第34页 |
| 1．2．5 转化毛状根的鉴方法 | 第34页 |
| 1．2．6 毛状根的分离、培养和优良无性系的选择 | 第34页 |
| 1．2．7 转化毛状根的培养条件 | 第34页 |
| 1．2．8 毛状根生长速率测定 | 第34-35页 |
| 2 结果与讨论 | 第35-55页 |
| 2．1 外植体抗生素敏感性实验 | 第35页 |
| 2．2 毛状根诱导过程观察 | 第35-36页 |
| 2．3 发根农杆菌介导的菘蓝遗传转化条件优化 | 第36页 |
| 2．3．1 不同菌株对转化频率的影响 | 第36-37页 |
| 2．3．2 菌液浓度对转化频率的影响 | 第37-38页 |
| 2．3．3 外植体部位对转化频率的影响 | 第38-39页 |
| 2．3．4 外植体的生理状态对转化频率的影响 | 第39-40页 |
| 2．3．5 预培养时间对转化频率的影响 | 第40-41页 |
| 2．3．6 共培养时间对转化频率的影响 | 第41-42页 |
| 2．3．7 诱导信号分子对转化频率的影响 | 第42-43页 |
| 2．4 转化毛状根的筛选 | 第43-45页 |
| 2．5 转化毛状根的鉴定 | 第45页 |
| 2．5．1 形态学鉴定 | 第45页 |
| 2．5．2 冠瘿碱的检测 | 第45-46页 |
| 2．6 毛状根的分离、培养和优良克隆的选择 | 第46-47页 |
| 2．7 培养基种类对转化毛状根生长的影响 | 第47-49页 |
| 2．8 毛状根生长速率的测定 | 第49-51页 |
| 第五部分 菘蓝次生代谢产物靛蓝、靛玉红的定性定量分析 | 第51页 |
| 1 材料和方法 | 第51页 |
| 1．1 实验材料 | 第51页 |
| 1．2 研究方法 | 第51页 |
| 1．2．1 色谱条件 | 第51页 |
| 1．2．2 样品预处理 | 第51-52页 |
| 2 结果与讨论 | 第52页 |
| 2．1 标准曲线的制定 | 第52-53页 |
| 2．2 精密度实验 | 第53页 |
| 2．3 检测结果 | 第53-55页 |
| 结论 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 图版与说明 | 第64-68页 |
| 附图一： 高效液相色谱图 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 附： 研究生期间发表的论文情况 | 第70页 |
