| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-32页 |
| ·川楝素的研究进展 | 第15-24页 |
| ·川楝素的发现及其理化性质 | 第15-16页 |
| ·川楝素生理及药理作用研究 | 第16-19页 |
| ·川楝素杀虫作用应用研究进展 | 第19-22页 |
| ·川楝素的分析方法 | 第22-24页 |
| ·农药免疫分析技术及其研究进展 | 第24-30页 |
| ·农药免疫分析技术的程序 | 第24-28页 |
| ·农药免疫分析方法在农药学研究中的应用 | 第28-30页 |
| ·本研究的提出 | 第30-32页 |
| 第二章 川楝素人工抗原的合成和鉴定 | 第32-41页 |
| ·材料与方法 | 第32-36页 |
| ·试剂和试材 | 第32-33页 |
| ·主要试验仪器 | 第33页 |
| ·试验方法 | 第33-36页 |
| ·半抗原的合成 | 第33-34页 |
| ·川楝素人工抗原的合成 | 第34-36页 |
| ·半抗原的鉴定方法 | 第36页 |
| ·人工抗原的鉴定方法 | 第36页 |
| ·结果与分析 | 第36-39页 |
| ·化合物TSN-S | 第36-39页 |
| ·人工抗原的鉴定 | 第39页 |
| ·讨论 | 第39-40页 |
| ·川楝素半抗原的设计思路 | 第39-40页 |
| ·人工抗原的鉴定方法应根据半抗原和抗原的性质具体选择 | 第40页 |
| ·小结 | 第40-41页 |
| 第三章 抗川楝素单克隆抗体的杂交瘤细胞株的建立 | 第41-54页 |
| ·材料和方法 | 第41-47页 |
| ·试剂 | 第41-42页 |
| ·主要仪器设备 | 第42-43页 |
| ·实验动物及细胞 | 第43页 |
| ·试验方法 | 第43-47页 |
| ·结果与分析 | 第47-51页 |
| ·BALB/C 小鼠免疫结果 | 第47-48页 |
| ·细胞融合 | 第48页 |
| ·杂交瘤细胞的形态观察 | 第48-49页 |
| ·杂交瘤细胞的筛选 | 第49-50页 |
| ·杂交瘤细胞株的效价和特异性 | 第50-51页 |
| ·杂交瘤细胞培养上清抗体亚型 | 第51页 |
| ·讨论 | 第51-53页 |
| ·免疫次数和免疫原剂量对免疫效果有较大影响 | 第51页 |
| ·血清的选择对融合成功至关重要 | 第51-52页 |
| ·骨髓瘤细胞的状态是融合成功的一个重要因素 | 第52页 |
| ·饲养细胞对杂交瘤生成的影响 | 第52页 |
| ·应选择合适的融和剂浓度和用量 | 第52-53页 |
| ·应适时改变选择性培养基 | 第53页 |
| ·杂交瘤细胞阳性筛选的时间非常重要 | 第53页 |
| ·小结 | 第53-54页 |
| 第四章 单克隆抗体的制备及川楝素间接竞争ELISA 方法的建立 | 第54-68页 |
| ·材料与方法 | 第54-58页 |
| ·试验材料和试剂 | 第54-55页 |
| ·试验仪器 | 第55-56页 |
| ·试验方法 | 第56-58页 |
| ·结果与分析 | 第58-65页 |
| ·杂交瘤细胞株的扩大培养和腹水制备 | 第58-59页 |
| ·腹水抗体的蛋白含量 | 第59页 |
| ·单抗和包被原最佳工作浓度的确定 | 第59-60页 |
| ·单抗效价的确定 | 第60页 |
| ·IC-ELISA 条件的优化 | 第60-62页 |
| ·单克隆抗体灵敏度的测定 | 第62-63页 |
| ·单克隆抗体特异性测定 | 第63-64页 |
| ·蒸馏水中川楝素含量分析 | 第64-65页 |
| ·讨论 | 第65-67页 |
| ·单克隆抗体的大量制备方法 | 第65页 |
| ·ELISA 分析条件的优化中应注意的几个因素 | 第65-67页 |
| ·小结 | 第67-68页 |
| 第五章 川楝制品中川楝素含量的IC-ELISA 测定方法 | 第68-74页 |
| ·材料与方法 | 第68-70页 |
| ·试剂和材料 | 第68页 |
| ·试验仪器 | 第68-69页 |
| ·试验方法 | 第69-70页 |
| ·结果与分析 | 第70-72页 |
| ·川楝素IC-ELISA 方法标准曲线的建立 | 第70-71页 |
| ·0.5%楝素乳油中川楝素含量的测定结果 | 第71页 |
| ·川楝树皮和川楝子中川楝素含量测定结果 | 第71-72页 |
| ·讨论 | 第72-73页 |
| ·小结 | 第73-74页 |
| 第六章 IC-ELISA 分析法测定水和土壤中的川楝素 | 第74-84页 |
| ·材料和方法 | 第75-78页 |
| ·试验试剂 | 第75页 |
| ·供试水体和土壤 | 第75-76页 |
| ·仪器设备 | 第76页 |
| ·间接竞争ELISA | 第76-77页 |
| ·IC-ELISA 标准曲线的测定 | 第77页 |
| ·水中添加回收率试验 | 第77页 |
| ·川楝素的水解 | 第77页 |
| ·土壤中添加回收 | 第77页 |
| ·川楝素在土壤中的降解 | 第77-78页 |
| ·结果与分析 | 第78-82页 |
| ·标准曲线 | 第78-79页 |
| ·川楝素在水中的添加回收率 | 第79-80页 |
| ·川楝素在水中的降解动态 | 第80页 |
| ·川楝素在水中的降解动力参数 | 第80页 |
| ·川楝素在土壤中的添加回收 | 第80-81页 |
| ·川楝素在土壤中的降解动态 | 第81-82页 |
| ·川楝素在土壤中的降解动力参数 | 第82页 |
| ·讨论 | 第82-83页 |
| ·ELISA 方法适用于环境样品中川楝素的检测 | 第82页 |
| ·川楝素在水和土壤中稳定性差，不易造成环境污染 | 第82-83页 |
| ·小结 | 第83-84页 |
| 第七章 果蔬中川楝素残留的间接竞争ELISA 方法分析 | 第84-93页 |
| ·材料与方法 | 第84-86页 |
| ·试验试剂 | 第84-85页 |
| ·供试蔬菜 | 第85页 |
| ·仪器设备 | 第85页 |
| ·样品前处理方法的选择 | 第85页 |
| ·间接竞争ELISA | 第85-86页 |
| ·IC-ELISA 标准曲线的测定 | 第86页 |
| ·基质对IC-ELISA 的影响 | 第86页 |
| ·准确度试验 | 第86页 |
| ·精密度试验 | 第86页 |
| ·结果与分析 | 第86-91页 |
| ·标准曲线 | 第86-87页 |
| ·样品提取条件的优化 | 第87-88页 |
| ·基质对ELISA 的影响 | 第88-89页 |
| ·IC-ELISA 分析方法的准确度 | 第89-90页 |
| ·IC-ELISA 分析方法的精密度 | 第90-91页 |
| ·讨论 | 第91-92页 |
| ·果蔬样品基质对川楝素ELISA 检测有一定的影响 | 第91页 |
| ·ELISA 法可快速灵敏检测果蔬中的痕量川楝素 | 第91-92页 |
| ·小结 | 第92-93页 |
| 第八章 川楝素对粘虫中肠超微结构的影响及其在中肠上结合的定位研究 | 第93-106页 |
| ·材料与方法 | 第93-96页 |
| ·试剂和试材 | 第93-94页 |
| ·供试昆虫 | 第94页 |
| ·仪器设备 | 第94页 |
| ·试虫处理 | 第94页 |
| ·中肠透射电镜 | 第94-95页 |
| ·中肠免疫电镜 | 第95-96页 |
| ·结果与分析 | 第96-103页 |
| ·川楝素对粘虫中肠细胞超微结构的影响 | 第96-100页 |
| ·川楝素在粘虫中肠上皮细胞内的免疫定位 | 第100-103页 |
| ·讨论 | 第103-105页 |
| ·免疫金染色过程中需注意的问题 | 第103页 |
| ·川楝素可严重破坏粘虫中肠上皮细胞膜 | 第103页 |
| ·川楝素的胃毒作用靶标需进一步研究 | 第103-105页 |
| ·小结 | 第105-106页 |
| 第九章 总结 | 第106-108页 |
| 参考文献 | 第108-123页 |
| 致谢 | 第123-125页 |
| 作者简介 | 第125页 |
