| 缩略语表 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-13页 |
| 文献回顾 | 第13-33页 |
| 一、少突胶质细胞相关临床疾病 | 第13-16页 |
| （一） 脱髓鞘疾病 | 第13-14页 |
| （二） 胶质瘤 | 第14-16页 |
| 二、少突胶质细胞的发育和分化 | 第16-31页 |
| （一） 少突胶质细胞的起源和分化 | 第16-22页 |
| 1、神经元和胶质细胞共同的前体细胞：多能干细胞 | 第17-18页 |
| 2、VZ 中的少突胶质前体细胞(precursor cell) | 第18页 |
| 3、SVZ 中的少突胶质细胞祖细胞 | 第18-19页 |
| 4、少突胶质细胞迁移的机制 | 第19-22页 |
| 5、少突胶质细胞的成熟阶段 | 第22页 |
| （二） 少突胶质细胞发育所需的营养因子 | 第22-23页 |
| 1、少突胶质细胞存活和成熟所必需的因子 | 第22-23页 |
| 2、影响髓鞘形成的因子 | 第23页 |
| （三） 少突胶质细胞的形态 | 第23-26页 |
| （四） 少突胶质细胞的特异组分 | 第26-29页 |
| 1、少突胶质细胞系成熟过程中的Marker | 第27-28页 |
| 2、髓鞘标志物 | 第28-29页 |
| 3、其它少突胶质细胞蛋白标志物 | 第29页 |
| （五） 少突胶质的其它细胞生物学特性 | 第29-31页 |
| 1、接触抑制作用 | 第29-30页 |
| 2、调节神经元和胶质细胞的存活与功能 | 第30页 |
| 3、构成神经网络 | 第30-31页 |
| 三、本文研究的HERMIN 分子 | 第31-33页 |
| 正文 | 第33-54页 |
| 实验一 | 第33-45页 |
| 1 材料 | 第33-34页 |
| ·主要仪器 | 第33页 |
| ·主要试剂 | 第33页 |
| ·实验动物 | 第33-34页 |
| 2 方法 | 第34-37页 |
| ·hErmin160、hErmin 148 原核表达载体的构建以及hErmin160 蛋的诱导和纯化 | 第34-36页 |
| ·hErmin160 抗血清的制备和纯化 | 第36-37页 |
| 3 结果 | 第37-43页 |
| ·hErmin160、hErmin148 编码序列的扩 | 第37-38页 |
| ·表达载体pET41-b(+)-hErmin160、pET41-b(+)-hErmin148 的酶 鉴定和测序 | 第38-41页 |
| ·hErmin160 融合蛋白的表达和纯化 | 第41页 |
| ·hErmin160 融合蛋白的Western-blot 鉴定 | 第41-42页 |
| ·抗血清和纯化的hErmin160 抗体的Western-blot 检测 | 第42-43页 |
| 4 讨论 | 第43-45页 |
| ·hErmin160 融合蛋白的表达 | 第43页 |
| ·hErmin160 融合蛋白的纯化 | 第43-44页 |
| ·抗hErmin160 多克隆抗体的纯化 | 第44-45页 |
| 实验二 | 第45-54页 |
| 1 材料 | 第45-46页 |
| ·主要仪器 | 第45页 |
| ·主要试剂 | 第45页 |
| ·组织标本 | 第45-46页 |
| 2 方法 | 第46-47页 |
| ·用纯化的抗体鉴定正常人脑组织中表达的hErmin 分子 | 第46-47页 |
| ·细胞免疫荧光法观察hErmin 过表达对细胞形态的影响 | 第47页 |
| ·免疫组织化学法检测胶质瘤石蜡切片中hErmin 分子表达的特点 | 第47页 |
| 3 结果 | 第47-51页 |
| ·hErmin 真核表达载体的构建 | 第47-48页 |
| ·hErmin 在正常人脑组织中的鉴定 | 第48-49页 |
| ·hErmin 真核表达载体的转染和免疫荧光检测 | 第49-50页 |
| ·hErmin 在人胶质瘤中的表达特点 | 第50-51页 |
| 4 讨论 | 第51-54页 |
| ·人脑少突胶质瘤中hErmin 和Oli92 表达的关系 | 第51页 |
| ·hErmin 和其它ERM 家族成员 | 第51-54页 |
| 小结 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 个人简历和研究成果 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
