摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第1章 文献综述 | 第13-29页 |
1.1 非编码RNA的研究进展 | 第13-18页 |
1.1.1 非编码RNA定义和生物学功能 | 第13-14页 |
1.1.2 LncRNA参与生物体基因调控 | 第14-15页 |
1.1.3 LncRNA与人类疾病 | 第15-18页 |
1.2 重金属环境污染 | 第18-24页 |
1.2.1 重金属污染 | 第18-19页 |
1.2.2 重金属的毒性效应 | 第19-24页 |
1.3 重金属对lncRNA的影响 | 第24-25页 |
1.4 斑马鱼胚胎在毒理学中的应用 | 第25-26页 |
1.5 本文研究目的意义和内容 | 第26-29页 |
第2章 汞化合物对斑马鱼胚胎的毒性效应研究 | 第29-35页 |
2.1 材料与方法 | 第29-31页 |
2.1.1 实验试剂和仪器 | 第29页 |
2.1.2 斑马鱼养殖和胚胎获取 | 第29-30页 |
2.1.3 胚胎暴露实验设计 | 第30页 |
2.1.4 死亡率及畸形率显微观察 | 第30-31页 |
2.1.5 统计分析 | 第31页 |
2.2 实验结果 | 第31-33页 |
2.2.1 氯化汞和甲基汞暴露对斑马鱼畸形率的影响 | 第31-32页 |
2.2.2 氯化汞和甲基汞对斑马鱼胚胎的LC_(50)计算 | 第32-33页 |
2.3 讨论 | 第33-35页 |
第3章 重金属化合物暴露斑马鱼胚胎后lncRNA筛选 | 第35-45页 |
3.1 材料与方法 | 第35-38页 |
3.1.1 实验试剂和仪器 | 第35-36页 |
3.1.2 胚胎暴露实验设计 | 第36-37页 |
3.1.3 胚胎总RNA提取和逆转录 | 第37页 |
3.1.4 荧光PCR测定 | 第37-38页 |
3.1.5 统计分析 | 第38页 |
3.2 实验结果 | 第38-43页 |
3.2.1 氯化汞暴露后5种lncRNA的表达变化 | 第38-39页 |
3.2.2 醋酸铅暴露后5种lncRNA的表达变化 | 第39-40页 |
3.2.3 铬酸钾暴露后5种lncRNA的表达变化 | 第40页 |
3.2.4 氯化镉暴露后5种lncRNA的表达变化 | 第40-41页 |
3.2.5 重金属暴露斑马鱼胚胎后lncRNA malat1 表达变化 | 第41-43页 |
3.3 讨论 | 第43-45页 |
第4章 斑马鱼胚胎中lncRNA malat1的生物信息学分析和表达 | 第45-61页 |
4.1 材料和方法 | 第45-51页 |
4.1.1 实验试剂和仪器 | 第45-46页 |
4.1.2 实验设计 | 第46-47页 |
4.1.3 胚胎总RNA提取和逆转录 | 第47-48页 |
4.1.4 荧光PCR测定 | 第48页 |
4.1.5 lncRNA malat1 原位杂交 | 第48-50页 |
4.1.6 统计分析 | 第50-51页 |
4.2 实验结果和讨论 | 第51-57页 |
4.2.1 斑马鱼lncRNA malat1 生物信息学分析 | 第51-52页 |
4.2.2 斑马鱼胚胎发育过程中lncRNA malat1 的表达 | 第52-53页 |
4.2.3 氯化汞暴露后malat1在斑马鱼胚胎中的时空表达 | 第53-55页 |
4.2.4 甲基汞暴露后malat1在斑马鱼胚胎中的空间表达 | 第55-57页 |
4.3 小结 | 第57-61页 |
第5章 氯化汞暴露对斑马鱼胚胎的神经毒性研究 | 第61-69页 |
5.1 材料和方法 | 第61-64页 |
5.1.1 实验试剂和仪器 | 第61-62页 |
5.1.2 实验设计 | 第62页 |
5.1.3 胚胎总RNA提取和逆转录 | 第62-63页 |
5.1.4 荧光PCR测定 | 第63页 |
5.1.5 斑马鱼运动速率分析 | 第63-64页 |
5.1.6 结果统计 | 第64页 |
5.2 实验结果 | 第64-66页 |
5.2.1 氯化汞暴露后斑马鱼运动速率分析 | 第64-65页 |
5.2.2 氯化汞暴露后斑马鱼相关神经基因的表达 | 第65-66页 |
5.3 讨论 | 第66-69页 |
第6章 讨论 | 第69-71页 |
总结与展望 | 第71-73页 |
参考文献 | 第73-83页 |
攻读硕士期间已发表的论文 | 第83-85页 |
致谢 | 第85页 |