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细胞抗病毒天然免疫信号转导的调控机制

摘要第1-7页
Abstract第7-12页
第一章 研究背景第12-42页
 第一节 天然免疫对病原微生物的识别第12-24页
  一、天然免疫概述第12-13页
  二、天然免疫的模式识别受体第13-24页
 第二节 抗病毒天然免疫的信号转导及其调控机制第24-36页
  一、抗病毒天然免疫信号转导概述第24-25页
  二、Ⅰ型干扰素基因转录调控机制第25-27页
  三、模式识别受体介导的天然免疫信号转导第27-33页
  四、模式识别受体介导的信号转导中的调控机制第33-36页
 第三节 病毒诱导Ⅰ型干扰素表达的早、晚期事件和干扰素效应因子第36-42页
  一、病毒诱导Ⅰ型干扰素基因表达的早、晚期事件第36-39页
  二、干扰素诱导的效应因子第39-42页
第二章 实验材料和实验方法第42-53页
 第一节 实验材料第42-44页
  一、细胞系、细胞培养和细胞因子第42页
  二、病毒第42页
  三、抗体第42-43页
  四、表达载体第43页
  五、核酸操作及检测试剂盒第43页
  六、其它试剂第43-44页
  七、耗材第44页
  八、特殊仪器和设备第44页
 第二节 实验方法第44-53页
  一、表达载体构建和质粒纯化第44-45页
  二、细胞培养和瞬时转染第45-46页
  三、原代细胞的分离培养和转染第46-47页
  四、荧光素酶报告基因实验第47页
  五、蛋白复合物的纯化和质谱鉴定第47-48页
  六、免疫共沉淀和Western Blot检测第48-49页
  七、非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳第49页
  八、RT-PCR第49-50页
  九、VSV空斑实验第50页
  十、体外结合核酸实验第50-51页
  十一、通过逆转录病毒载体构建稳定表达细胞系第51页
  十二、细胞核质分离和亚细胞器分离第51-52页
  十三、免疫荧光和激光共聚焦显微镜观察第52-53页
第三章 实验结果和讨论一:新型核酸受体LSM14A的鉴定及其功能研究第53-87页
 第一节 研究背景与立项依据概述第53-54页
 第二节 实验结果第54-84页
  一、基因库筛选第54-56页
  二、过量表达LSM14A激活ISRE、NF-κB和IFN-β启动子第56-59页
  三、下调内源性LSM14A表达抑制病毒感染诱导的Ⅰ型干扰素表达第59-67页
  四、LSM14A参与细胞抗病毒反应第67-68页
  五、LSM14A参与SeV感染早期Ⅰ型干扰素的表达第68-71页
  六、人肠癌HCT116细胞LSM14A-Flag-Knock-in细胞系的构建第71-72页
  七、LSM14A定位于细胞质第72-73页
  八、LSM14A结合poly(I:C)和poly(dA:dT)第73-75页
  九、LSM14A与RIG-I、VISA相互作用第75-78页
  十、LSM14A介导Ⅰ型干扰素表达需要RIG-I的参与第78-80页
  十一、LSM14A、RIG-I、VISA与P-bodies的共定位第80-84页
 第三节 小结和讨论第84-87页
第四章 实验结果和讨论二:1SG56负反馈调节病毒诱导的Ⅰ型干扰素表达第87-107页
 第一节 研究背景与立项依据概述第87-88页
 第二节 实验结果第88-104页
  一、ISG56和ISG54是MITA相互作用蛋白第88-91页
  二、过量表达ISG56抑制病毒诱导的ISRE和IFN-β的激活第91-96页
  三、内源性ISG56的表达下调促进病毒感染诱导的IFN-β激活第96-100页
  四、ISG56负调控细胞抗病毒反应第100-101页
  五、1SG56阻断MITA-VISA和MITA-TBK1的相互作用第101-104页
 第三节 小结和讨论第104-107页
第五章 研究总结和展望第107-109页
参考文献第109-120页
缩略词表第120-122页
作者简历第122-124页
致谢第124-125页

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