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糖对匍枝根霉产纤维素酶抑制分析及β-葡萄糖苷酶的结构优化

摘要第5-8页
ABSTRACT第8-12页
第1章 绪论第16-25页
    1.1 选题意义第16页
    1.2 纤维素及其预处理第16-18页
        1.2.1 纤维素第16-17页
        1.2.2 纤维素的预处理第17-18页
    1.3 纤维素酶及其应用第18-19页
        1.3.1 纤维素酶第18-19页
        1.3.2 纤维素酶的应用第19页
    1.4 纤维素酶的分离纯化第19-21页
        1.4.1 根据蛋白质大小分离第20页
        1.4.2 利用蛋白质等电点进行分离第20-21页
    1.5 纤维素酶的抑制剂第21-25页
        1.5.1 纤维素酶水解过程中的抑制剂第21-22页
        1.5.2 β-葡糖苷酶及其产物抑制第22-25页
第2章 纤维素酶的分离纯化第25-37页
    2.1 材料和方法第25-27页
        2.1.1 材料第25页
        2.1.2 实验药品和主要仪器第25页
        2.1.3 溶液的配置第25-27页
    2.2 实验方法第27-32页
        2.2.1 匍枝根霉上罐发酵第27页
        2.2.2 DNS法测量还原糖第27页
        2.2.3 纤维素酶活测定第27页
        2.2.4 粗酶液的制备第27页
        2.2.5 硫酸铵分级沉淀第27-28页
        2.2.6 蛋白质性质分析第28页
        2.2.7 凝胶层析第28页
        2.2.8 过DEAE-SepharoseFF阴离子交换层析第28-29页
        2.2.9 过CM-SepharoseFF阳离子交换层析柱第29页
        2.2.10 脱盐第29页
        2.2.11 SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳检测第29-30页
        2.2.12 蛋白质标准曲线第30页
        2.2.13 最适反应温度的测定第30-31页
        2.2.14 最适反应pH的测定第31页
        2.2.15 纯化后纤维素酶Km值的测定第31-32页
    2.3 结果与讨论第32-36页
        2.3.1 匍枝根霉上罐发酵第32页
        2.3.2 葡萄糖标准曲线的绘制第32页
        2.3.3 硫酸铵分级沉淀第32页
        2.3.4 蛋白质标准曲线绘制第32-33页
        2.3.5 过凝胶过滤层析柱第33页
        2.3.6 过DEAE-SepharoseFF阴离子交换层析柱第33-34页
        2.3.7 过CM-SepharoseFF阳离子交换层析柱第34-35页
        2.3.8 温度对纤维素酶的影响第35页
        2.3.9 pH对纤维素酶的影响第35-36页
        2.3.10 纤维素酶Km值的测定第36页
    2.4 小结第36-37页
第3章 酶学性质研究以及抑制机理分析第37-48页
    3.1 材料与方法第37页
        3.1.1 菌株和材料第37页
    3.2 实验方法第37-39页
        3.2.1 初步探究匍枝根霉产纤维素酶系的最优比例第37-38页
        3.2.2 不同时间内水解滤纸产生的还原糖量第38页
        3.2.3 用糖柱测量纤维素酶水解产生的糖第38页
        3.2.4 糖和醇对BG的影响第38页
        3.2.5 糖和醇对CBH的影响第38页
        3.2.6 糖和醇对EG的影响第38-39页
        3.2.7 MVD模拟分析第39页
    3.3 结果和分析第39-47页
        3.3.1 探究匍枝根霉产纤维素酶系的最优比例第39-40页
        3.3.2 不同时间水解滤纸产生的还原糖量第40页
        3.3.3 色谱柱测量糖量第40-41页
        3.3.4 糖和醇对纤维素酶系的影响第41-43页
        3.3.5 MVD分析模拟BG结合区的结合第43-45页
        3.3.6 MVD分析模拟BG活性中心催化区的结合第45-47页
    3.4 总结第47-48页
第4章 重组菌的分离纯化及其研究第48-61页
    4.1 菌种和培养基第48-49页
        4.1.1 菌种第48页
        4.1.2 培养基第48页
        4.1.3 实验仪器和药品第48-49页
    4.2 实验方法第49-54页
        4.2.1 BG基因的结构和生物信息学分析第49页
        4.2.2 定点突变引物的设计第49-50页
        4.2.3 BG基因的突变第50页
        4.2.4 pET22b菌的培养第50页
        4.2.5 质粒提取第50页
        4.2.6 PCR克隆第50页
        4.2.7 重叠PCR引物第50-52页
        4.2.8 重叠PCR定点突变第52页
        4.2.9 链接第52页
        4.2.10 JM109感受态细胞的制备第52页
        4.2.11 转化第52页
        4.2.12 挑取阳性克隆第52页
        4.2.13 测序第52页
        4.2.14 PCR克隆第52页
        4.2.15 单酶切目的基因和载体第52页
        4.2.16 链接第52-53页
        4.2.17 转化第53页
        4.2.18 挑取阳性克隆第53页
        4.2.19 纯化第53页
        4.2.20 重组菌的发酵第53页
        4.2.21 目的蛋白的表达第53-54页
        4.2.22 粗酶液的制备第54页
        4.2.23 目的蛋白的纯化第54页
        4.2.24 BG、BG1和BG2酶学性质的研究第54页
    4.3 结果与讨论第54-61页
        4.3.1 BG的结构分析第54-55页
        4.3.2 突变后的BG第55-56页
        4.3.3 重叠PCR突变BG第56-57页
        4.3.4 测序第57页
        4.3.5 转化第57页
        4.3.6 挑菌验证第57-58页
        4.3.7 目的蛋白的表达第58页
        4.3.8 纯化后BG的SDS-凝胶电泳第58-59页
        4.3.9 酶学性质的研究第59-61页
第5章 结论与展望第61-63页
    结论第61-62页
    展望第62-63页
参考文献第63-74页
攻读硕士期间发表论文第74-75页
致谢第75-76页

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