| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-28页 |
| 1.1 奶牛乳房炎 | 第16页 |
| 1.2 奶牛乳房炎的病因 | 第16-17页 |
| 1.3 乳房炎治疗所面临的问题 | 第17-18页 |
| 1.4 生物被膜 | 第18-28页 |
| 1.4.1 生物被膜的简述 | 第18页 |
| 1.4.2 构成生物被膜基质的主要成分 | 第18-22页 |
| 1.4.3 生物被膜的形成机制 | 第22-23页 |
| 1.4.4 生物被膜的致病性表现 | 第23-24页 |
| 1.4.5 生物被膜的耐药性表现 | 第24-25页 |
| 1.4.6 葡萄球菌的生物被膜 | 第25-28页 |
| 第二章 牛奶组分及乳糖可刺激奶牛源金黄色葡萄球菌生物被膜形成及其分子机制 | 第28-40页 |
| 2.1 引言 | 第28页 |
| 2.2 材料与方法 | 第28-34页 |
| 2.2.1 实验菌株 | 第28-29页 |
| 2.2.2 实验试剂、酶及试剂盒 | 第29-30页 |
| 2.2.3 引物序列 | 第30-31页 |
| 2.2.4 实验仪器 | 第31页 |
| 2.2.5 培养基和染料配制方法 | 第31-32页 |
| 2.2.6 金黄色葡萄球菌基因组的抽提 | 第32-33页 |
| 2.2.7 金黄色葡萄球菌体外静止条件下成膜方法 | 第33页 |
| 2.2.8 RNA抽提及纯化 | 第33-34页 |
| 2.2.9 反转录实时荧光定量PCR | 第34页 |
| 2.3 结果 | 第34-38页 |
| 2.3.1 乳糖影响生物被膜的形成 | 第34-35页 |
| 2.3.2 乳糖通过影响PIA的合成而影响生物被膜的形成 | 第35-37页 |
| 2.3.3 乳糖通过rbf及其它未知调控基因影响生物被膜的形成 | 第37-38页 |
| 2.4 讨论 | 第38页 |
| 2.5 结论 | 第38-40页 |
| 第三章 地榆的醇提物对奶牛源金黄色葡萄球菌生物被膜的抑制效应及分子机制 | 第40-52页 |
| 3.1 引言 | 第40页 |
| 3.2 材料与方法 | 第40-46页 |
| 3.2.1 实验菌株 | 第40-41页 |
| 3.2.2 实验试剂、酶及试剂盒 | 第41-42页 |
| 3.2.3 引物序列 | 第42页 |
| 3.2.4 实验仪器 | 第42-43页 |
| 3.2.5 培养基和染料配制方法 | 第43页 |
| 3.2.6 金黄色葡萄球菌基因组的抽提 | 第43-44页 |
| 3.2.7 地榆醇提物对金黄色葡萄球菌生长曲线的影响 | 第44页 |
| 3.2.8 金黄色葡萄球菌体外静止条件下成膜方法 | 第44-45页 |
| 3.2.9 地榆醇提物对金黄色葡萄球菌生物被膜的影响 | 第45页 |
| 3.2.10 生物被膜的激光扫描共聚焦显微镜检测 | 第45页 |
| 3.2.11 RNA抽提及纯化 | 第45-46页 |
| 3.2.12 反转录实时荧光定量PCR | 第46页 |
| 3.3 结果 | 第46-50页 |
| 3.3.1 地榆醇提物对金黄色葡萄球菌生长的抑制作用 | 第46-47页 |
| 3.3.2 地榆醇提物对金黄色葡萄球菌生物被膜形成的抑制作用 | 第47-49页 |
| 3.3.3 地榆醇提物通过降低ica操纵子的转录来抑制MRSA菌的生物被膜的形成 | 第49-50页 |
| 3.4 讨论 | 第50页 |
| 3.5 结论 | 第50-52页 |
| 第四章 AI-2群体感应对表皮葡萄球菌生物被膜调控的分子机制 | 第52-68页 |
| 4.1 引言 | 第52页 |
| 4.2 材料与方法 | 第52-58页 |
| 4.2.1 实验菌株 | 第52-53页 |
| 4.2.2 实验试剂、酶及试剂盒 | 第53-54页 |
| 4.2.3 引物序列 | 第54-55页 |
| 4.2.4 实验仪器 | 第55页 |
| 4.2.5 培养基和染料配制方法 | 第55-56页 |
| 4.2.6 表皮葡萄球菌基因组的抽提 | 第56-57页 |
| 4.2.7 表皮葡萄球菌体外静止条件下成膜方法 | 第57页 |
| 4.2.8 生物被膜的激光扫描共聚焦显微镜检测 | 第57页 |
| 4.2.9 RNA抽提及纯化 | 第57-58页 |
| 4.2.10 基因芯片及转录组学分析 | 第58页 |
| 4.2.11 反转录实时荧光定量PCR | 第58页 |
| 4.3 结果 | 第58-64页 |
| 4.3.1 AI-2促进表皮葡萄球菌菌株RP62A的生物被膜形成 | 第58-60页 |
| 4.3.2 AI-2对表皮葡萄球菌基因转录的影响 | 第60-62页 |
| 4.3.3 AI-2通过调节ica操纵子和bhp的转录影响生物被膜的形成 | 第62-64页 |
| 4.3.4 AI-2在细菌不同生长周期对生物被膜形成的影响 | 第64页 |
| 4.4 讨论 | 第64-66页 |
| 4.5 结论 | 第66-68页 |
| 第五章 玉米须水提液通过抑制奶牛源多重耐药金黄色葡萄球菌生物被膜增强其对万古霉素的敏感性 | 第68-82页 |
| 5.1 引言 | 第68页 |
| 5.2 材料与方法 | 第68-74页 |
| 5.2.1 实验菌株 | 第68-69页 |
| 5.2.2 实验试剂、酶及试剂盒 | 第69-70页 |
| 5.2.3 引物序列 | 第70页 |
| 5.2.4 实验仪器 | 第70-71页 |
| 5.2.5 培养基和染料配制方法 | 第71页 |
| 5.2.6 金黄色葡萄球菌基因组的抽提 | 第71-72页 |
| 5.2.7 玉米须水提液对金黄色葡萄球菌生长曲线的影响 | 第72页 |
| 5.2.8 金黄色葡萄球菌体外静止条件下成膜方法 | 第72-73页 |
| 5.2.9 玉米须水提液对金黄色葡萄球菌生物被膜的影响 | 第73页 |
| 5.2.10 生物被膜的激光扫描共聚焦显微镜检测 | 第73页 |
| 5.2.11 RNA抽提及纯化 | 第73-74页 |
| 5.2.12 反转录实时荧光定量PCR | 第74页 |
| 5.3 结果 | 第74-78页 |
| 5.3.1 高浓度的玉米须水提液不影响MRSA菌的生长 | 第74-75页 |
| 5.3.2 低浓度的玉米须水提液抑制MRSA菌株生物被膜的形成 | 第75-77页 |
| 5.3.3 玉米须水提液通过降低ica操纵子的转录抑制MRSA菌株生物被膜的形成 | 第77-78页 |
| 5.3.4 玉米须水提液提高了生物被膜生长状态下的MRSA菌株的万古霉素敏感性 | 第78页 |
| 5.4 讨论 | 第78-81页 |
| 5.5 结论 | 第81-82页 |
| 第六章 槲皮素纳米银颗粒对奶牛源多重耐药大肠杆菌的生长及生物被膜的抑制效应 | 第82-96页 |
| 6.1 引言 | 第82页 |
| 6.2 材料与方法 | 第82-90页 |
| 6.2.1 实验菌株 | 第82-83页 |
| 6.2.2 实验试剂、酶及试剂盒 | 第83-84页 |
| 6.2.3 引物序列 | 第84页 |
| 6.2.4 实验仪器 | 第84-85页 |
| 6.2.5 培养基和染料配制方法 | 第85-86页 |
| 6.2.6 大肠杆菌基因组的抽提 | 第86-87页 |
| 6.2.7 抗菌活性实验 | 第87页 |
| 6.2.8 大肠杆菌体外静止条件下生物被膜成膜时间的探究 | 第87页 |
| 6.2.9 不同成分对奶牛源大肠杆菌生物被膜成膜的影响 | 第87-88页 |
| 6.2.10 不同牛奶浓度对奶牛源大肠杆菌生物被膜成膜的影响 | 第88页 |
| 6.2.11 不同抗菌剂对奶牛源大肠杆菌生物被膜成膜的影响 | 第88-89页 |
| 6.2.12 扫描电子显微镜试验 | 第89页 |
| 6.2.13 大肠杆菌RNA抽提及纯化 | 第89-90页 |
| 6.2.14 反转录实时荧光定量PCR | 第90页 |
| 6.3 结果 | 第90-95页 |
| 6.3.1 槲皮素-纳米银复合颗粒对大肠杆菌菌株ECDCM1的抑菌活性 | 第90-92页 |
| 6.3.2 QANPs对于大肠杆菌菌株ECDCM1的生物被膜形成的抑制作用 | 第92-94页 |
| 6.3.3 QANPs通过降低生物被膜相关基因的转录抑制生物被膜的形成 | 第94-95页 |
| 6.4 讨论 | 第95页 |
| 6.5 结论 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-104页 |
| 作者简介 | 第104-105页 |
