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新型藻蓝蛋白/羧甲基壳聚糖纳米微球的制备及其对HeLa细胞生长的抑制作用研究

摘要第2-3页
Abstract第3页
前言第6-8页
第一章 实验材料第8-11页
    1.1 实验仪器设备第8页
    1.2 实验药品及试剂第8-10页
        1.2.1 主要药品第8-9页
        1.2.2 实验试剂第9-10页
    1.3 细胞株第10-11页
第二章 实验方法第11-19页
    2.1 藻蓝蛋白的提取及浓度测定第11页
        2.1.1 提取藻蓝蛋白(C-PC)第11页
        2.1.2 C-PC浓度测定第11页
    2.2 纳米微球的制备第11-12页
        2.2.1 负载藻蓝蛋白的羧甲基壳聚糖纳米微球(C-PC/CMCNPs)的制备第11页
        2.2.2 筛选制备C-PC/CMCNPs的最佳条件第11-12页
    2.3 纳米微球基本性质的检测第12-13页
        2.3.1 纳米微球粒径的测定第12页
        2.3.2 载药量及包封率的测定第12-13页
        2.3.3 红外光谱仪检测纳米微球表面官能团的特征第13页
        2.3.4 C-PC/CMCNPs的紫外及可见光吸收光谱第13页
        2.3.5 载药纳米微球体外药物释放实验第13页
    2.4 细胞培养实验第13-14页
        2.4.1 细胞传代第13页
        2.4.2 细胞计数第13-14页
        2.4.3 细胞冻存第14页
        2.4.4 细胞复苏第14页
        2.4.5 细胞爬片第14页
    2.5 实验分组第14页
    2.6 细胞实验相关检测第14-18页
        2.6.1 Cell Counting Kit-8(CCK-8)法检测药物对细胞增殖的影响第14-15页
        2.6.2 免疫组化法检测C-Jun氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase, JNK)第15-16页
        2.6.3 免疫荧光法检测Bcl-2 蛋白的表达第16页
        2.6.4 Western Blot法检测Caspase-3 蛋白的表达第16-17页
        2.6.5 流式细胞术检测细胞凋亡第17-18页
    2.7 统计学分析第18-19页
第三章 实验结果第19-28页
    3.1 C-PC/CMCNPs的相关检测第19-22页
        3.1.1 正交分析法优选制备C-PC/CMCNPs的最佳条件第19-20页
        3.1.2 粒径分布第20页
        3.1.3 微球表面官能团特征第20-21页
        3.1.4 载药纳米微球体外药物释放特征第21-22页
    3.2 细胞实验相关检测结果第22-28页
        3.2.1 C-PC/CMCNPs明显抑制He La细胞的增殖第22-23页
        3.2.2 免疫组化法检测JNK蛋白的表达水平第23-24页
        3.2.3 免疫荧光检测Bcl-2 蛋白的表达第24-25页
        3.2.4 Western Blot法测定Caspase-3 蛋白的表达第25-26页
        3.2.5 流式细胞术检测细胞凋亡第26-28页
讨论第28-31页
结论第31-32页
参考文献第32-36页
综述第36-49页
    综述参考文献第44-49页
攻读学位期间的研究成果第49-50页
致谢第50-52页

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