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苯扎贝特对2型糖尿病大鼠胰岛β细胞半胱天冬蛋白酶-3表达的影响

摘要第1-4页
ABSTRACT第4-10页
第1章 引言第10-13页
第2章 材料与方法第13-20页
   ·实验动物和饲料条件第13页
   ·实验试剂和仪器第13-15页
     ·实验试剂第13-14页
     ·主要仪器第14页
     ·部分试剂配制第14-15页
   ·2 型糖尿病大鼠模型的建立第15-16页
     ·高糖高脂喂养阶段第15页
     ·2型糖尿病大鼠建立第15页
     ·苯扎贝特干预第15页
     ·胰腺组织分离及固定第15-16页
   ·大鼠一般情况第16页
     ·一般情况第16页
   ·生化检测第16-17页
     ·甘油三酯、总胆固醇的检测第16页
     ·空腹血糖的检测第16页
     ·空腹胰岛素的检测第16页
     ·HOMA-IR 计算第16-17页
   ·胰腺组织病理学检测第17-19页
     ·石蜡组织切片制备步骤第17页
     ·HE 染色步骤第17页
     ·TUNEL 技术方法第17-18页
     ·免疫组化SP 法步骤第18-19页
   ·结果分析第19页
     ·胰岛β细胞凋亡检测及细胞凋亡率的计算第19页
     ·免疫组化SP 法检测胰岛caspase-3 表达第19页
   ·统计学方法第19-20页
第3章 实验结果第20-30页
   ·高糖高脂喂养8 周后大鼠一般情况及生化指标第20页
   ·成模糖尿病后大鼠一般情况第20-21页
   ·成模后血脂变化第21-23页
   ·成模后空腹血糖变化第23-24页
   ·成模后空腹胰岛素和HOMA-IR 变化第24-26页
   ·大鼠胰腺HE 染色第26-27页
   ·大鼠胰岛β细胞凋亡检测及凋亡率的计算第27-28页
   ·免疫组化SP 法检测caspase-3 的表达第28-30页
第4章 讨论第30-37页
   ·实验性2 型糖尿病大鼠模型的建立原理第30-31页
   ·脂代谢紊乱与2 型糖尿病第31页
   ·脂毒性与2 型糖尿病第31-33页
   ·脂质过氧化物酶增殖物激活受体(PPARs)概述第33-35页
   ·苯扎贝特改善糖代谢、对胰岛β细胞的保护作用第35-37页
第5章 结论和展望第37-38页
   ·结论第37页
   ·展望第37-38页
致谢第38-39页
参考文献第39-43页
攻读学位期间的研究成果第43-44页
综述第44-48页

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