| 中文摘要 | 第4-10页 |
| abstract | 第10-14页 |
| 前言 | 第18-31页 |
| 材料与方法 | 第31-49页 |
| 1、实验材料 | 第31-35页 |
| 1.1 实验动物 | 第31页 |
| 1.2 主要实验材料及试剂 | 第31-32页 |
| 1.3 手术器械和主要仪器 | 第32-33页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第33-35页 |
| 2、实验方法 | 第35-49页 |
| 2.1 分离制备胶过滤血小板 | 第35-36页 |
| 2.2 多肽合成 | 第36页 |
| 2.3 血小板聚集实验 | 第36页 |
| 2.4 流式细胞仪检测血小板表面CD62P的表达、fibrinogenbinding和活性氧ROS的产生 | 第36页 |
| 2.5 光学法测血小板的ATP释放 | 第36-37页 |
| 2.6 血小板活性测定实验 | 第37页 |
| 2.7 PS外翻测定实验 | 第37页 |
| 2.8 免疫印迹Westernblot | 第37-38页 |
| 2.9 血小板铺展实验 | 第38页 |
| 2.10 Bio-flux流动小室实验 | 第38-39页 |
| 2.11 HNG蛋白结合分析 | 第39-41页 |
| 2.12 质谱LC-MS | 第41-42页 |
| 2.13 生物信息学分析 | 第42-43页 |
| 2.14 免疫沉淀 | 第43页 |
| 2.15 半定量PCR | 第43-44页 |
| 2.16 细胞免疫荧光 | 第44-45页 |
| 2.17 分子结合模拟-ZDOCK | 第45页 |
| 2.18 FeCl3诱导的颈动脉损伤模型 | 第45-46页 |
| 2.19 小鼠尾巴出血时间测定 | 第46页 |
| 2.20 小鼠心肌缺血再灌注(MI/R)模型 | 第46-47页 |
| 2.21 骨髓细胞培养及巨核细胞的诱导 | 第47-48页 |
| 2.22 巨核细胞提取及流式方法检测 | 第48页 |
| 2.23 统计 | 第48-49页 |
| 实验结果 | 第49-75页 |
| 一、HNG抑制血小板活化 | 第49-55页 |
| 1.HNG抑制血小板聚集 | 第49-50页 |
| 2.HNG抑制血小板颗粒释放 | 第50-51页 |
| 3.HNG抑制血小板整合素αIIbβ3的活化以及在纤维蛋白原上的铺展 | 第51-53页 |
| 4.HNG不引起血小板的凋亡 | 第53-54页 |
| 5.HNG对血小板无毒性作用 | 第54-55页 |
| 二、HNG抑制血栓的形成 | 第55-59页 |
| 1.HNG抑制流动条件下血小板在胶原蛋白上的粘附 | 第55-56页 |
| 2.HNG抑制体内血栓形成 | 第56-58页 |
| 3.HNG对出血和凝血的影响 | 第58-59页 |
| 三、HNG对小鼠心肌缺血再灌注损伤I/R的保护作用可能部分是通过靶向血小板 | 第59-62页 |
| 1.HNG对小鼠心肌缺血再灌注损伤I/R有保护作用 | 第59-60页 |
| 2.HNG减弱了小鼠心肌缺血再灌注后的血栓炎症反应 | 第60-62页 |
| 四、HNG对血小板作用的机制和靶点 | 第62-75页 |
| 1.筛选HNG在血小板上的潜在结合蛋白 | 第62-63页 |
| 2.质谱分析和生物信息学分析 | 第63-65页 |
| 3.HNG在血小板上的一个作用靶点是β1-微管蛋白 | 第65-68页 |
| 4.HNG在血小板上的作用机制是抑制血小板微管解聚 | 第68-75页 |
| 讨论 | 第75-81页 |
| 结论 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-89页 |
| 综述 抗凋亡肽humanin衍生物HNG的治疗作用及机制的研究进展 | 第89-99页 |
| 参考文献 | 第96-99页 |
| 攻读学位期间公开发表的论文及会议摘要 | 第99-100页 |
| 中英文缩略词 | 第100-101页 |
| 致谢 | 第101-103页 |
