| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 综述 | 第12-40页 |
| 1.1 纳米材料的生物医药应用 | 第12-15页 |
| 1.1.1 药物载体 | 第12-13页 |
| 1.1.2 生物荧光成像 | 第13-14页 |
| 1.1.3 生物传感器 | 第14-15页 |
| 1.2 纳米材料的安全性评价 | 第15-28页 |
| 1.2.1 纳米材料的理化性质对其毒性的影响 | 第16-20页 |
| 1.2.2 纳米材料体外毒性 | 第20-23页 |
| 1.2.3 纳米材料体内毒性 | 第23-28页 |
| 1.3 本论文的选题背景与意义 | 第28-29页 |
| 参考文献 | 第29-40页 |
| 第二章 火焰原子吸收光谱法测定小鼠组织中锌含量 | 第40-46页 |
| 2.1 引言 | 第40-41页 |
| 2.2 材料与方法 | 第41-42页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第41页 |
| 2.2.2 实验动物 | 第41页 |
| 2.2.3 样品前处理 | 第41页 |
| 2.2.4 火焰原子吸收光谱法测定 | 第41页 |
| 2.2.5 标准曲线绘制 | 第41-42页 |
| 2.2.6 回收率测定 | 第42页 |
| 2.2.7 重现性测定 | 第42页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第42-44页 |
| 2.3.1 标准曲线 | 第42页 |
| 2.3.2 检测限(LOD)和定量限(LOQ) | 第42-43页 |
| 2.3.3 方法回收率 | 第43页 |
| 2.3.4 方法重现性 | 第43页 |
| 2.3.5 小鼠组织和器官内锌含量 | 第43-44页 |
| 2.4 结论 | 第44页 |
| 参考文献 | 第44-46页 |
| 第三章 ZnS和ZnO量子点在小鼠体内的毒性和分布 | 第46-66页 |
| 3.1 引言 | 第46-47页 |
| 3.2 材料与方法 | 第47-51页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第47页 |
| 3.2.2 ZnS和ZnO QDs的合成及表征 | 第47-48页 |
| 3.2.3 实验动物和处理 | 第48-49页 |
| 3.2.4 体外溶血实验 | 第49页 |
| 3.2.5 火焰原子吸收法测量锌含量 | 第49页 |
| 3.2.6 血细胞计数 | 第49-50页 |
| 3.2.7 血液生化项目检查 | 第50页 |
| 3.2.8 组织病理检查 | 第50-51页 |
| 3.2.9 数据统计 | 第51页 |
| 3.3 结果 | 第51-61页 |
| 3.3.1 ZnS和ZnO QDs的表征 | 第51-55页 |
| 3.3.2 ZnS和ZnO QDs-PEG的体外溶血作用 | 第55-56页 |
| 3.3.3 ZnS和ZnO QDs-PEG的体内分布 | 第56-58页 |
| 3.3.4 ZnS和ZnO QDs-PEG对脏器系数的影响 | 第58-59页 |
| 3.3.5 ZnS和ZnO QDs-PEG对血细胞数目的影响 | 第59页 |
| 3.3.6 ZnS和ZnO QDs-PEG对血液生化指标的影响 | 第59-60页 |
| 3.3.7 病理切片检查结果 | 第60-61页 |
| 3.4 讨论 | 第61-62页 |
| 3.5 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-66页 |
| 第四章 ZnO量子点对小鼠肝脏的毒性作用 | 第66-80页 |
| 4.1 引言 | 第66页 |
| 4.2 材料与方法 | 第66-71页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第66-67页 |
| 4.2.2 体外溶血实验 | 第67页 |
| 4.2.3 实验动物和处理 | 第67页 |
| 4.2.4 肝脏脏器系数测定 | 第67页 |
| 4.2.5 测量血清ALT和AST活性 | 第67页 |
| 4.2.6 制备肝脏组织匀浆 | 第67-68页 |
| 4.2.7 匀浆上清液中蛋白质含量的测定 | 第68-69页 |
| 4.2.8 测量肝脏中氧化应激相关酶类的含量 | 第69-70页 |
| 4.2.9 肝脏组织脂质过氧化水平测量 | 第70页 |
| 4.2.10 肝细胞超微结构观察 | 第70-71页 |
| 4.2.11 数据统计 | 第71页 |
| 4.3 结果 | 第71-76页 |
| 4.3.1 ZnO QDs的溶血作用 | 第71-72页 |
| 4.3.2 小鼠体重和肝脏脏器系数的变化 | 第72-73页 |
| 4.3.3 血清转氨酶的含量变化 | 第73-74页 |
| 4.3.4 肝脏抗氧化酶的活性变化 | 第74页 |
| 4.3.5 肝脏脂质过氧化水平的变化 | 第74页 |
| 4.3.6 肝脏超微结构观察结果 | 第74-76页 |
| 4.4 讨论 | 第76-77页 |
| 4.5 结论 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-80页 |
| 第五章 Mn掺杂ZnS量子点对小鼠肝脏的毒性作用 | 第80-92页 |
| 5.1 引言 | 第80页 |
| 5.2 材料与方法 | 第80-82页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第80-81页 |
| 5.2.2 Mn掺杂ZnS QDs的合成 | 第81页 |
| 5.2.3 Mn掺杂ZnS QDs的表征 | 第81页 |
| 5.2.4 实验动物 | 第81页 |
| 5.2.5 体重和脏器系数 | 第81页 |
| 5.2.6 测量血清ALT和AST活性 | 第81页 |
| 5.2.7 制备肝脏组织匀浆 | 第81页 |
| 5.2.8 测量肝脏中氧化应激相关酶类的含量 | 第81页 |
| 5.2.9 肝脏组织脂质过氧化水平测定 | 第81-82页 |
| 5.2.10 肝细胞超微结构观察 | 第82页 |
| 5.2.11 数据统计 | 第82页 |
| 5.3 结果 | 第82-87页 |
| 5.3.1 Mn掺杂ZnS QDs的表征 | 第82-84页 |
| 5.3.2 小鼠体重和肝脏脏器系数的变化 | 第84-85页 |
| 5.3.3 血清转氨酶的含量变化 | 第85页 |
| 5.3.4 肝脏抗氧化酶的活性变化 | 第85-86页 |
| 5.3.5 肝脏脂质过氧化水平的变化 | 第86页 |
| 5.3.6 肝细胞超微结构的观察结果 | 第86-87页 |
| 5.4 讨论 | 第87-90页 |
| 5.5 结论 | 第90页 |
| 参考文献 | 第90-92页 |
| 第六章 金纳米簇在人源肝癌细胞中的毒性评价 | 第92-103页 |
| 6.1 引言 | 第92页 |
| 6.2 材料与方法 | 第92-95页 |
| 6.2.1 实验试剂 | 第93页 |
| 6.2.2 DHLA稳定Au NCs的制备和表征 | 第93页 |
| 6.2.3 细胞培养 | 第93页 |
| 6.2.4 细胞活力实验 | 第93-94页 |
| 6.2.5 乳酸脱氢酶实验 | 第94页 |
| 6.2.6 活性氧簇(ROS)实验 | 第94-95页 |
| 6.2.7 细胞周期实验 | 第95页 |
| 6.2.8 数据统计 | 第95页 |
| 6.3. 结果 | 第95-99页 |
| 6.3.1 DHLA稳定Au NCs的表征 | 第95-96页 |
| 6.3.2 DHLA稳定Au NCs对细胞活力的影响 | 第96-98页 |
| 6.3.3 DHLA稳定Au NCs对细胞外乳酸脱氢酶浓度的影响 | 第98页 |
| 6.3.4 DHLA稳定Au NCs诱导的氧化应激反应 | 第98-99页 |
| 6.3.5 DHLA稳定Au NCs对细胞周期的影响 | 第99页 |
| 6.4 讨论 | 第99-100页 |
| 6.5 结论 | 第100页 |
| 参考文献 | 第100-103页 |
| 结论与展望 | 第103-105页 |
| 在学期间的研究成果 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106页 |
