摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
缩略词表 | 第13-14页 |
前言 | 第14-17页 |
第一章 人参水提物的制备及标志性成分的选择与定量 | 第17-24页 |
1 仪器与材料 | 第17-18页 |
1.1 仪器 | 第17页 |
1.2 药品与试剂 | 第17-18页 |
2 实验方法 | 第18-20页 |
2.1 人参水提物的制备 | 第18页 |
2.2 标志性成分的选择 | 第18页 |
2.3 标志性成分的定量 | 第18-20页 |
3 结果 | 第20-23页 |
3.1 人参水提物的总离子流色谱图 | 第20-21页 |
3.2 UPLC/MS方法学考察 | 第21-23页 |
4 讨论 | 第23-24页 |
第二章 附子水提物的制备及标志性成分的选择与定量 | 第24-31页 |
1 仪器与材料 | 第24页 |
1.1 仪器 | 第24页 |
1.2 药品与试剂 | 第24页 |
2 实验方法 | 第24-27页 |
2.1 附子水提物的制备 | 第24页 |
2.2 标志性成分的选择 | 第24-25页 |
2.3 标志性成分的定量 | 第25-27页 |
3 结果 | 第27-30页 |
3.1 附子水提物的总离子流色谱图 | 第27-28页 |
3.2 UPLC/MS方法学考察 | 第28-30页 |
4 讨论 | 第30-31页 |
第三章 细胞毒性实验及Caco-2细胞单层模型的建立与评价 | 第31-37页 |
1 仪器与材料 | 第31-32页 |
1.1 仪器 | 第31页 |
1.2 药品与试剂 | 第31-32页 |
2 实验方法 | 第32-34页 |
2.1 Caco-2细胞培养 | 第32页 |
2.2 细胞毒性实验 | 第32-33页 |
2.3 模型接种与培养 | 第33页 |
2.4 跨膜电阻的测定 | 第33页 |
2.5 阳性对照药表观通透系数的测定 | 第33-34页 |
3 结果 | 第34-36页 |
3.1 细胞形态考察 | 第34页 |
3.2 细胞毒性实验 | 第34-36页 |
3.3 跨膜电阻值 | 第36页 |
3.4 阳性对照药的表观通透系数值 | 第36页 |
4 讨论 | 第36-37页 |
第四章 人参水提物和人参皂苷Rg1在Caco-2模型上的转运 | 第37-41页 |
1 仪器与材料 | 第37-38页 |
1.1 仪器 | 第37页 |
1.2 药品与试剂 | 第37-38页 |
2 实验方法 | 第38页 |
2.1 受试药液配制 | 第38页 |
2.2 向转运 | 第38页 |
3 结果 | 第38-40页 |
3.1 人参水提物的双向转运 | 第38-40页 |
3.2 人参皂苷Rg1的双向转运 | 第40页 |
4 讨论 | 第40-41页 |
第五章 附子水提物和双酯型生物碱单体在Caco-2模型上的转运 | 第41-50页 |
1 仪器与材料 | 第41-42页 |
1.1 仪器 | 第41页 |
1.2 药品与试剂 | 第41-42页 |
2 实验方法 | 第42页 |
2.1 受试药液配制 | 第42页 |
2.2 双向转运 | 第42页 |
3 结果 | 第42-48页 |
3.1 附子水提物的双向转运 | 第42-44页 |
3.2 加入人参水提物时附子水提物的双向转运 | 第44-46页 |
3.3 加入P-糖蛋白抑制剂时附子水提物的双向转运 | 第46页 |
3.4 双酯型乌头类生物碱单体的双向转运 | 第46-47页 |
3.5 加入转运体抑制剂时双酯型乌头碱类生物碱单体的双向转运 | 第47-48页 |
4 讨论 | 第48-50页 |
第六章 人参水提物对P-糖蛋白功能和表达的影响 | 第50-57页 |
1 仪器与材料 | 第50-51页 |
1.1 仪器 | 第50页 |
1.2 药品与试剂 | 第50-51页 |
2 实验方法 | 第51-54页 |
2.1 溶液配制 | 第51-52页 |
2.2 罗丹明123外排 | 第52页 |
2.3 Real-Time qPCR | 第52-53页 |
2.4 Western blot | 第53-54页 |
3 结果 | 第54-56页 |
3.1 人参水提物对P-糖蛋白功能的影响 | 第54-56页 |
3.2 人参水提物对MDR1 mRNA表达的影响 | 第56页 |
3.3 人参水提物对P-糖蛋白表达的影响 | 第56页 |
4 讨论 | 第56-57页 |
结论 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-63页 |
附录 | 第63-70页 |
参考文献 | 第68-70页 |
攻读学位期间主要的研究成果目录 | 第70-71页 |
致谢 | 第71页 |