| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-25页 |
| 1.1 国内藻类水华现状 | 第12-13页 |
| 1.2 藻类水华发生的成因 | 第13-15页 |
| 1.3 水体富营养化的危害 | 第15-19页 |
| 1.4.1 控制外源性营养物质 | 第16页 |
| 1.4.2 减少内源性营养物质 | 第16-19页 |
| 1.5 除藻微生物制剂的研究进展 | 第19-23页 |
| 1.5.1 除藻细菌种类 | 第19-21页 |
| 1.5.2 除藻微生物制剂研究进展 | 第21-23页 |
| 1.6 课题研究目的、内容及意义 | 第23-25页 |
| 1.6.1 研究目的 | 第23-24页 |
| 1.6.2 研究内容及意义 | 第24-25页 |
| 第二章 除藻微生物制剂细菌多样性分析 | 第25-39页 |
| 2.1 细菌多样性分析技术概述 | 第25-28页 |
| 2.2 实验材料与仪器设备 | 第28-29页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第28页 |
| 2.2.2 实验分析仪器和设备 | 第28页 |
| 2.2.3 实验主要试剂 | 第28-29页 |
| 2.3 实验方法 | 第29-34页 |
| 2.3.1 样品的制备 | 第29页 |
| 2.3.2 总 DNA 的提取 | 第29-30页 |
| 2.3.3 PCR 产物的验证 | 第30-31页 |
| 2.3.4 DGGE 实验 | 第31-34页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第34-37页 |
| 2.4.1 总 DNA 提取 | 第34-35页 |
| 2.4.2 PCR 产物的验证 | 第35-36页 |
| 2.4.3 DGGE 指纹图谱分析 | 第36-37页 |
| 2.5 本章小结 | 第37-39页 |
| 第三章 除藻微生物制剂活化研究 | 第39-46页 |
| 3.1 实验材料 | 第39-40页 |
| 3.1.1 除藻微生物制剂 | 第39-40页 |
| 3.1.2 实验仪器和设备 | 第40页 |
| 3.2 实验方法 | 第40-42页 |
| 3.2.1 红糖对 IBC 活化的影响 | 第40页 |
| 3.2.2 尿素对 IBC 活化的影响 | 第40页 |
| 3.2.3 溶解氧对 IBC 活化的影响 | 第40-41页 |
| 3.2.4 活化条件正交实验 | 第41页 |
| 3.2.5 细菌菌落计数 | 第41-42页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第42-45页 |
| 3.3.1 红糖对 IBC 活化的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.2 尿素对 IBC 活化的影响 | 第43页 |
| 3.3.3 溶解氧对 IBC 活化的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.4 正交实验活化结果 | 第44-45页 |
| 3.4 本章小结 | 第45-46页 |
| 第四章 活化后除藻微生物制剂除藻特性的研究 | 第46-55页 |
| 4.1 实验材料 | 第46页 |
| 4.2 实验分析仪器和设备 | 第46-47页 |
| 4.3 实验方法 | 第47-48页 |
| 4.3.1 藻种培养 | 第47-48页 |
| 4.3.2 实验设计 | 第48页 |
| 4.3.3 分析方法 | 第48页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第48-53页 |
| 4.4.1 IBC 活化前后藻细胞及叶绿素 a 去除率比较 | 第48-49页 |
| 4.4.2 叶绿素 a 含量的变化 | 第49-50页 |
| 4.4.3 无机氮素的变化 | 第50-51页 |
| 4.4.4 无机磷含量的变化 | 第51-52页 |
| 4.4.5 除藻微生物制剂活化前后成本分析 | 第52-53页 |
| 4.5 小结 | 第53-55页 |
| 结论与展望 | 第55-57页 |
| 结论 | 第55-56页 |
| 展望 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 附件 | 第65页 |