中文摘要 | 第1-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
引言 | 第11-24页 |
实验一 鸡毒支原体JN 株的分离培养和鉴定 | 第24-28页 |
1 材料和方法 | 第24-25页 |
·MG 平板凝集抗原及抗血清 | 第24页 |
·病料 | 第24页 |
·培养基 | 第24页 |
·分离培养 | 第24页 |
·初步鉴定 | 第24-25页 |
·L-型细菌检验 | 第24-25页 |
·菌体形态观察 | 第25页 |
·四氮唑还原试验 | 第25页 |
·菌落着色 | 第25页 |
·生长抑制试验 | 第25页 |
·鸡胚感染试验 | 第25页 |
·鸡红细胞吸附试验 | 第25页 |
2 结果 | 第25-26页 |
·分离培养 | 第25页 |
·初步鉴定 | 第25-26页 |
·L-型细菌检验 | 第25页 |
·菌体形态观察 | 第25页 |
·四氮唑还原试验 | 第25-26页 |
·菌落着色 | 第26页 |
·生长抑制试验 | 第26页 |
·鸡胚感染试验 | 第26页 |
·鸡红细胞吸附试验 | 第26页 |
3 讨论与小结 | 第26-28页 |
实验二 鸡毒支原体JN 株的生物学特性及结构蛋白分析 | 第28-32页 |
1 材料与方法 | 第28-29页 |
·MG 菌株 | 第28页 |
·鸡血清及SPF 鸡胚 | 第28页 |
·培养基 | 第28页 |
·血清对MG 生长的影响 | 第28页 |
·不同代次MG 在培养基上的生长稳定性 | 第28-29页 |
·致病性试验 | 第29页 |
·结构蛋白SDS-PAGE 分析 | 第29页 |
2 结果 | 第29-31页 |
·血清对MG 生长的影响 | 第29页 |
·MG 对鸡气管环的致病性试验结果 | 第29-30页 |
·结构蛋白SDS-PAGE 结果 | 第30-31页 |
3 讨论与小结 | 第31-32页 |
实验三 三种支原体多重PCR 检测方法的建立及应用 | 第32-39页 |
1 材料与方法 | 第32-35页 |
·菌株 | 第32页 |
·试剂 | 第32页 |
·引物 | 第32-33页 |
·培养物制备 | 第33页 |
·DNA 提取 | 第33-34页 |
·DNA 粗制物制备 | 第34页 |
·单一PCR 反应 | 第34页 |
·单管多重PCR 反应体系的优化及特异性分析 | 第34-35页 |
·PCR 用于鸡毒支原体临床样品的检测 | 第35页 |
2 结果 | 第35-37页 |
·多重PCR 最佳反应体系 | 第35页 |
·多重PCR 扩增结果及特异性分析 | 第35-37页 |
·PCR 对临床样品的检测结果 | 第37页 |
3 讨论和小结 | 第37-39页 |
实验四 多重RT-PCR 诊断禽支原体与其他呼吸道病原方法建立及应用 | 第39-46页 |
1 材料和方法 | 第39-43页 |
·病毒株 | 第39页 |
·鸡胚 | 第39页 |
·试剂 | 第39页 |
·引物 | 第39-40页 |
·支原体培养和病毒增殖 | 第40页 |
·RNA、DNA 提取 | 第40-41页 |
·MG、MS 的DNA 提取 | 第40-41页 |
·AVI、NDV、IBV 的RNA 提取 | 第41页 |
·ILTV 的DNA 提取 | 第41页 |
·cDNA 的制备 | 第41-42页 |
·单一PCR/单一RT-PCR 反应 | 第42页 |
·单管多重RT-PCR 反应体系的优化 | 第42-43页 |
2 结果 | 第43-44页 |
·单一PCR/RT-PCR 反应结果 | 第43页 |
·多重RT-PCR 扩增结果及优化后的反应体系 | 第43页 |
·多重RT-PCR 的扩增结果 | 第43-44页 |
3 结果与小结 | 第44-46页 |
实验五 不同方法处理种蛋对控制鸡毒支原体病的效果试验 | 第46-50页 |
1 材料与方法 | 第46-47页 |
·材料 | 第46页 |
·方法 | 第46-47页 |
·浸泡法 | 第46-47页 |
·温差法 | 第47页 |
·熏蒸法 | 第47页 |
·检测方法 | 第47页 |
2 结果 | 第47-48页 |
3 讨论与小结 | 第48-50页 |
结论 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-57页 |
致谢 | 第57-58页 |
攻读学位期间发表的论文 | 第58页 |