| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 目录 | 第9-11页 |
| 符号说明 | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-15页 |
| 第二章 材料与方法 | 第15-22页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第15-17页 |
| 2.1.1 实验材料、细胞 | 第15页 |
| 2.1.2 试剂与仪器 | 第15-17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-21页 |
| 2.2.1 高纯度纳米雄黄的制备 | 第17-18页 |
| 2.2.2 实验药物配制 | 第18页 |
| 2.2.3 雄黄颗粒对HepG2细胞凋亡诱导作用 | 第18-21页 |
| 2.3 统计学分析 | 第21-22页 |
| 第三章 结果 | 第22-31页 |
| 3.1 天然雄黄纯化效果分析 | 第22页 |
| 3.2 雄黄颗粒电镜扫描图 | 第22-23页 |
| 3.3 不同组别雄黄颗粒As2S2含量与颗粒粒度分析 | 第23-24页 |
| 3.4 不同组别雄黄颗粒作用HepG2细胞后增殖率分析 | 第24-25页 |
| 3.5 不同组别雄黄颗粒作用HepG2细胞后形态变化 | 第25-26页 |
| 3.6 不同组别雄黄颗粒作用HepG2细胞后Hoechst染色 | 第26-28页 |
| 3.7 不同组别雄黄颗粒作用HepG2细胞后流式分析 | 第28-29页 |
| 3.8 不同组别雄黄颗粒处理HepG2细胞后Bcl-2和Bax表达水平 | 第29-31页 |
| 第四章 讨论 | 第31-35页 |
| 4.1 雄黄纯化原理 | 第31页 |
| 4.2 纳米雄黄颗粒制备 | 第31-32页 |
| 4.3 纯化纳米雄黄颗粒诱导HepG2凋亡 | 第32-35页 |
| 4.3.1 MTT法检测HepG2细胞增殖抑制率 | 第32-33页 |
| 4.3.2 HepG2细胞凋亡时形态学变化 | 第33页 |
| 4.3.3 流式细胞仪检测HepG2细胞凋亡 | 第33-34页 |
| 4.3.4 RT-PCR检测凋亡基因的表达 | 第34-35页 |
| 第五章 结论 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-41页 |
| 综述 | 第41-49页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 发表学术论文 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
