| 中文摘要 | 第12-15页 |
| Abstract | 第15-18页 |
| 符号说明 | 第19-21页 |
| 第一章 前言 | 第21-28页 |
| 1. 骨关节炎概述 | 第21页 |
| 2. 氧化应激与骨关节炎 | 第21-23页 |
| 2.1 氧化应激 | 第21-22页 |
| 2.2 骨关节炎的氧化应激机制 | 第22-23页 |
| 3. 骨关节炎的治疗 | 第23-25页 |
| 3.1 骨关节炎的临床治疗 | 第23-24页 |
| 3.2 骨关节炎的抗氧化治疗 | 第24-25页 |
| 4. 骨关节炎动物模型 | 第25-26页 |
| 5. 本课题研究的目的和意义 | 第26-28页 |
| 5.1 前期研究基础 | 第26-27页 |
| 5.2 本课题拟解决的问题 | 第27-28页 |
| 第二章 O-HTCC-SOD的制备和表征 | 第28-42页 |
| 1. 实验材料 | 第28-29页 |
| 1.1 仪器 | 第28页 |
| 1.2 试剂 | 第28-29页 |
| 1.3 溶液 | 第29页 |
| 2. 实验方法 | 第29-34页 |
| 2.1 O-HTCC的合成 | 第29-30页 |
| 2.2 O-HTCC的表征 | 第30页 |
| 2.3 O-HTCC-SOD的制备和分离纯化 | 第30-31页 |
| 2.4 O-HTCC-SOD的表征 | 第31-34页 |
| 3. 实验结果与分析 | 第34-40页 |
| 3.1 O-HTCC的结构表征 | 第34-36页 |
| 3.2 O-HTCC-SOD的分离纯化 | 第36-37页 |
| 3.3 O-HTCC-SOD的表征分析 | 第37-40页 |
| 4. 讨论 | 第40-41页 |
| 4.1 壳聚糖用作蛋白质药物修饰剂 | 第40页 |
| 4.2 壳聚糖修饰蛋白类药物的方法 | 第40-41页 |
| 4.3 壳聚糖修饰蛋白类药物的研究进展 | 第41页 |
| 5. 本章小结 | 第41-42页 |
| 第三章 O-HTCC-SOD对软骨细胞损伤的保护作用 | 第42-55页 |
| 1. 实验材料 | 第42-43页 |
| 1.1 仪器 | 第42页 |
| 1.2 实验试剂 | 第42-43页 |
| 1.3 实验动物 | 第43页 |
| 1.4 溶液 | 第43页 |
| 2. 实验方法 | 第43-47页 |
| 2.1 大鼠软骨细胞的分离、培养与鉴定 | 第43-45页 |
| 2.2 O-HTCC-SOD的软骨细胞毒实验 | 第45-46页 |
| 2.3 O-HTCC-SOD与MIA共同孵育对软骨细胞增殖的影响 | 第46页 |
| 2.4 O-HTCC-SOD与MIA依次孵育对软骨细胞增殖的影响 | 第46页 |
| 2.5 O-HTCC-SOD对MIA诱导的软骨细胞胞内ROS水平的影响 | 第46-47页 |
| 2.6 数据处理 | 第47页 |
| 3. 实验结果与分析 | 第47-53页 |
| 3.1 大鼠软骨细胞的形态与鉴定 | 第47-49页 |
| 3.2 O-HTCC-SOD对软骨细胞的毒性 | 第49页 |
| 3.3 O-HTCC-SOD与MIA共同孵育对软骨细胞增殖的影响 | 第49-51页 |
| 3.4 O-HTCC-SOD与MIA依次孵育对软骨细胞增殖的影响 | 第51-52页 |
| 3.5 O-HTCC-SOD对软骨细胞胞内ROS水平的影响 | 第52-53页 |
| 4. 讨论 | 第53-54页 |
| 5. 本章小结 | 第54-55页 |
| 第四章 关节腔注射O-HTCC-SOD大鼠体内药动学初步研究 | 第55-60页 |
| 1. 实验材料 | 第55-56页 |
| 1.1 仪器 | 第55页 |
| 1.2 试剂与耗材 | 第55页 |
| 1.3 动物 | 第55页 |
| 1.4 溶液 | 第55-56页 |
| 2. 实验方法 | 第56页 |
| 2.1 动物给药和分组方案 | 第56页 |
| 2.2 关节滑液样品采集 | 第56页 |
| 2.3 大鼠关节滑液中药物浓度检测 | 第56页 |
| 2.4 数据处理 | 第56页 |
| 3. 实验结果与分析 | 第56-59页 |
| 3.1 关节腔单次注射给药后关节腔内SOD酶活残留量测定 | 第56-58页 |
| 3.2 SOD和O-HTCC-SOD的关节腔消除动力学 | 第58-59页 |
| 4. 讨论 | 第59页 |
| 5. 本章小结 | 第59-60页 |
| 第五章 O-HTCC-SOD对大鼠骨关节炎的治疗作用 | 第60-81页 |
| 1. 实验材料 | 第60-61页 |
| 1.1 仪器 | 第60页 |
| 1.2 试剂与耗材 | 第60-61页 |
| 1.3 溶液 | 第61页 |
| 1.4 实验动物 | 第61页 |
| 2. 实验方法 | 第61-64页 |
| 2.1 大鼠膝骨关节炎模型的制备、分组及给药方法 | 第61-62页 |
| 2.2 大鼠膝骨关节炎模型的观察指标与评分方法 | 第62-63页 |
| 2.3 大鼠膝骨关节炎痛感评价 | 第63-64页 |
| 2.4 生化指标检测 | 第64页 |
| 2.5 数据分析 | 第64页 |
| 3. 实验结果 | 第64-79页 |
| 3.1 大鼠OA模型的建立 | 第64-65页 |
| 3.2 大鼠膝关节的大体及组织学评价 | 第65-73页 |
| 3.3 O-HTCC-SOD对MIA诱导大鼠膝关节痛感的缓解作用 | 第73-74页 |
| 3.4 大鼠外周血清中IL-1β、IL-6和TNF-α的含量 | 第74-77页 |
| 3.5 大鼠膝关节滑膜组织匀浆中MDA和GSH的含量 | 第77-79页 |
| 4. 讨论 | 第79-80页 |
| 5. 本章小结 | 第80-81页 |
| 第六章 总结与展望 | 第81-83页 |
| 1. 总结 | 第81页 |
| 2. 展望 | 第81-83页 |
| 参考文献 | 第83-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 攻读硕士学位期间学术成果 | 第92-93页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第93页 |
