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上转换发光纳米材料的构建及其生物成像应用研究

中文摘要第9-11页
Abstract第11-14页
第一章 用于生物成像的上转换发光材料的研究进展第15-53页
    1.1 绪论第15页
    1.2 光学成像第15-16页
    1.3 用于生物成像的上转换发光材料第16-41页
        1.3.1 用于生物成像的稀土上转换发光纳米材料(UCNPs)第17-27页
            1.3.1.1 稀土上转换纳米材料的制备及水溶性改性和功能化第19-22页
            1.3.1.2 稀土上转换发光纳米材料作为造影剂用于生物成像第22-27页
        1.3.2 用于生物成像的基于三线态-三线态湮灭的上转换发光材料第27-41页
            1.3.2.1 基于三线态-三线态湮灭的上转换发光的原理及上转换效率的测定第27-28页
            1.3.2.2 对敏化剂和受体分子的要求第28-29页
            1.3.2.3 基于三线态-三线态湮灭的上转换发光体系的构建第29-39页
            1.3.2.4 基于三线态-三线态湮灭的上转换纳米材料的构建及水溶性改善第39-41页
    1.4 本论文的设计思想及研究内容第41-43页
    参考文献第43-53页
第二章 NaLuF_4基质的稀土上转换发光纳米材料第53-75页
    2.1 引言第53-54页
    2.2 实验部分第54-57页
        2.2.1 试剂和药品第54页
        2.2.2 稀土上转换发光纳米晶的制备,水溶性改性第54-55页
        2.2.3 表征第55页
        2.2.4 上转换量子效率测试第55-56页
        2.2.5 细胞培养第56页
        2.2.6 细胞毒性试验第56页
        2.2.7 稀土上转换纳米晶标记细胞及成像实验第56-57页
        2.2.8 动物第57页
        2.2.9 cit-Lu6-Tm和cit-Y1-Tm黑鼠成像第57页
        2.2.10 细胞转移的体内跟踪第57页
    2.3 结果与讨论第57-69页
        2.3.1 油胺配位的稀土上转换纳米晶的制备与表征第57-61页
        2.3.2 油胺包裹的稀土上转换发光纳米晶的发光性质第61-65页
        2.3.3 Lu6-Tm的水溶性改性及细胞成像第65-67页
        2.3.4 基于NaLuF_4的Tm掺杂的UCNPs用于动物活体成像第67-69页
    2.4 本章小结第69页
    参考文献第69-75页
第三章 通过主客体间相互作用构建水溶性上转换纳米晶第75-102页
    3.1 引言第75-76页
    3.2 实验部分第76-81页
        3.2.1 试剂和药品第76-77页
        3.2.2 实验仪器和方法第77页
        3.2.3 金刚烷酸为配体的上转换发光纳米晶(UCNPs-Ad)的合成第77页
        3.2.4 金刚烷酸为配体的下转换发光纳米晶(DCNPs-Ad)的合成第77页
        3.2.5 不掺杂的稀土纳米晶(RENPs-Ad)的合成第77页
        3.2.6 转换油溶性UCNPs-Ad为水溶性UCNPs-Ad/β-CD第77-78页
        3.2.7 热分解法合成油酸稳定的NaYF_4:20mol%Yb,2mol%Er(记为UCNP-OAA~T)第78页
        3.2.8 溶剂热法合成油酸稳定的NaYF_4:20mol%Yb,2mol%Er(记为UCNP-OA~S)第78页
        3.2.9 水热法合成油酸稳定的NaYF_4:20mol%Yb,2mol%Er(记为UCNP-OA~H)第78-79页
        3.2.10 疏水性UCNP转换成相应的亲水性样品第79页
        3.2.11 UCNP(Tm)-OA~T负载Os(Ⅱ)配合物第79页
        3.2.12 合成18F标记的UCNP(Tm)-OA-CD~T第79页
        3.2.13 细胞培养第79页
        3.2.14 细胞毒性试验第79-80页
        3.2.15 活细胞染色和共聚焦成像第80-81页
        3.2.16 上转换发光的小鼠活体成像第81页
        3.2.17 生物分布和PET活体成像第81页
    3.3 UCNPs-Ad/β-CD结果与讨论第81-88页
        3.3.1 UCNPs-Ad/β-CD的合成和表征第81-84页
        3.3.2 UCNPs-Ad/β-CD的上转换发光光谱第84-86页
        3.3.3 UCNPs-Ad/β-CD应用于细胞成像第86-88页
    3.4 UCNP-OA-CD结果与讨论第88-99页
        3.4.1 UCNP-OA-CD的合成与表征第88-93页
        3.4.2 活细胞与UCNP-OA-CD~T的相互作用第93-95页
        3.4.3 UCNP(Tm)-OA-CD~T负载油溶性染料锇配合物并用于生物成像第95-96页
        3.4.5 小动物全身上转换发光成像第96-97页
        3.4.6 上转换发光活体淋巴成像第97-98页
        3.4.7 生物分布和活体PET成像第98-99页
    3.5 本章小结第99页
    参考文献第99-102页
第四章 钌配合物组装的纳米复合体用于高效上转换发光的Hg~(2+)传感器及生物成像第102-119页
    4.1 引言第102-103页
    4.2 实验部分第103-105页
        4.2.1 试剂和药品第103页
        4.2.2 实验仪器和方法第103-104页
        4.2.3 油胺配位的UCNPs的合成(OM-UCNPs)第104页
        4.2.4 UCNPs表面组装配合物N719(N719-UCNPs)第104页
        4.2.5 PAA包覆的UCNPs合成(PAA-UCNPs)第104页
        4.2.6 平均分子重量和配体N719装载数目计算第104页
        4.2.7 N719-UCNPs的光谱测试和金属离子滴定第104-105页
        4.2.8 细胞培养第105页
        4.2.9 细胞毒性第105页
        4.2.10 上转换发光成像第105页
    4.3 结果与讨论第105-115页
        4.3.1 Hg~(2+)UCL纳米传感器的设计原理第105-106页
        4.3.2 OM-UCNPs和N719-UCNPs的表征第106-110页
        4.3.3 N719-UCNPs的Hg~(2+)传感能力第110-114页
        4.3.4 活细胞中感应Hg~(2+)第114-115页
    4.4 本章小结第115页
    参考文献第115-119页
第五章 稀土阳离子辅助的配体组装构建18F标记的磁性上转换发光纳米晶第119-141页
    5.1 引言第119-120页
    5.2 实验部分第120-124页
        5.2.1 试剂和药品第120-121页
        5.2.2 实验仪器和方法第121页
        5.2.3 油胺配位的UCNPs的合成(OM-UCNPs)第121页
        5.2.4 Gd~(3+)包覆的UCNPs的合成(Gd-UCNPs)第121-122页
        5.2.5 羧酸配体组装(AA/OA/FA-Gd-UCNPs,FA-AA-Gd-UCNPs)第122页
        5.2.6 18F标记的AA-Gd-UCNPs的合成(18F-AA-Gd-UCNPs)第122页
        5.2.7 细胞培养第122页
        5.2.8 FA-AA-Gd-UCNPs的细胞毒性第122页
        5.2.9 细胞染色第122-123页
        5.2.10 FA-AA-Gd-UCNPs孵育的活细胞共聚焦成像第123页
        5.2.11 上转换发光活体成像第123页
        5.2.12 体外弛豫率测试第123页
        5.2.13 磁共振活体成像第123-124页
        5.2.14 PET活体成像和离体组织分布第124页
    5.3 结果与讨论第124-135页
        5.3.1 纳米晶的表征第124-125页
        5.3.2 表面修饰的表征第125-129页
        5.3.3 上转换发光第129-130页
        5.3.4 细胞毒性和细胞成像第130-132页
        5.3.5 活体上转换发光成像第132-133页
        5.3.6 弛豫率测试和活体磁共振成像第133-134页
        5.3.7 PET活体成像第134-135页
    5.4 本章小结第135-136页
    参考文献第136-141页
第六章 低功率激发的基于三线态-三线态湮灭的上转换发光应用至活体成像第141-156页
    6.1 引言第141-142页
    6.2 实验部分第142-144页
        6.2.1 试剂和药品第142页
        6.2.2 实验仪器和方法第142-143页
        6.2.3 TTA-UCNP的合成第143页
        6.2.4 上转换量子效率的测定第143页
        6.2.5 细胞培养第143页
        6.2.6 细胞毒性第143-144页
        6.2.7 细胞染色第144页
        6.2.8 共聚焦细胞成像第144页
        6.2.9 活体成像第144页
    6.3 结果与讨论第144-152页
        6.3.1 TTA-UCNP的合成和表征第145-147页
        6.3.2 TTA-UCNP的上转换发光性质第147-148页
        6.3.3 细胞毒性及共聚焦成像第148-151页
        6.3.4 TTA-UCNP用于活体成像第151-152页
    6.4 本章小结第152页
    参考文献第152-156页
第七章 水溶性的基于三线态-三线态湮灭的上转换纳米胶囊第156-179页
    7.1 引言第156-157页
    7.2 实验部分第157-159页
        7.2.1 试剂和药品第157页
        7.2.2 实验仪器和方法第157-158页
        7.2.3 TTA-UCL纳米胶囊的合成第158页
        7.2.4 SiO_2包覆的TTA-UCL纳米材料的合成第158-159页
        7.2.5 上转换量子效率的测定第159页
        7.2.6 穿透深度的研究第159页
        7.2.7 绿光和黄光发射的TTA-UCL纳米胶囊用于活体成像第159页
    7.3 结果与讨论第159-175页
        7.3.1 SiO_2包覆的TTA-UCL体系的发光性质第160-162页
        7.3.2 TTA-UCL体系在大豆油中的光物理性质第162-168页
        7.3.3 TTA-UCL纳米胶囊的表征第168-170页
        7.3.4 TTA-UCL纳米胶囊的光物理性质第170-172页
        7.3.5 TTA-UCL纳米胶囊穿透深度的研究第172-173页
        7.3.6 TTA-UCL纳米胶囊应用于活体成像第173-175页
    7.4 本章小结第175页
    参考文献第175-179页
第八章 光稳定性增强的近红外激发的基于三线态-三线态湮灭上转换体系的构建第179-192页
    8.1 引言第179-181页
    8.2 实验部分第181-182页
        8.2.1 试剂和药品第181页
        8.2.2 实验仪器和方法第181页
        8.2.3 TTA-UCL纳米胶囊的合成第181-182页
        8.2.4 上转换量子效率的测定第182页
    8.3 结果与讨论第182-190页
        8.3.1 PdPC(OBu)_8&BPEN在甲苯中的光物理性质第182-184页
        8.3.2 PdPC(OBu)_8&BPEN在不同溶剂中的光稳定性以及上转换发光第184-187页
        8.3.3 上转换发光纳米胶囊UCNC-O的结构表征第187-189页
        8.3.4 UCNC-O的上转换发光性质及光稳定性第189-190页
    8.4 本章小结第190页
    参考文献第190-192页
第九章 近红外激发和发射的基于三线态-三线态湮灭的上转换发光及其应用于光动力学治疗的探索第192-200页
    9.1 引言第192-193页
    9.2 实验部分第193-194页
        9.2.1 试剂和药品第193页
        9.2.2 实验仪器和方法第193页
        9.2.3 纳米胶囊的合成第193-194页
        9.2.4 上转换量子效率的测定第194页
        9.2.5 UCNC-Ce6单线态氧产生的测定第194页
    9.3 结果与讨论第194-197页
        9.3.1 PdPC(OBu)_8&TBI在大豆油中的光物理性质第195-197页
        9.3.2 UCNC-Ce6单线态氧产生的测定第197页
    9.4 本章小结和展望第197-198页
    参考文献第198-200页
第十章 论文主要结论第200-202页
攻读博士学位期间论文发表情况第202-205页
致谢第205-207页

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