中文摘要 | 第9-11页 |
Abstract | 第11-14页 |
第一章 用于生物成像的上转换发光材料的研究进展 | 第15-53页 |
1.1 绪论 | 第15页 |
1.2 光学成像 | 第15-16页 |
1.3 用于生物成像的上转换发光材料 | 第16-41页 |
1.3.1 用于生物成像的稀土上转换发光纳米材料(UCNPs) | 第17-27页 |
1.3.1.1 稀土上转换纳米材料的制备及水溶性改性和功能化 | 第19-22页 |
1.3.1.2 稀土上转换发光纳米材料作为造影剂用于生物成像 | 第22-27页 |
1.3.2 用于生物成像的基于三线态-三线态湮灭的上转换发光材料 | 第27-41页 |
1.3.2.1 基于三线态-三线态湮灭的上转换发光的原理及上转换效率的测定 | 第27-28页 |
1.3.2.2 对敏化剂和受体分子的要求 | 第28-29页 |
1.3.2.3 基于三线态-三线态湮灭的上转换发光体系的构建 | 第29-39页 |
1.3.2.4 基于三线态-三线态湮灭的上转换纳米材料的构建及水溶性改善 | 第39-41页 |
1.4 本论文的设计思想及研究内容 | 第41-43页 |
参考文献 | 第43-53页 |
第二章 NaLuF_4基质的稀土上转换发光纳米材料 | 第53-75页 |
2.1 引言 | 第53-54页 |
2.2 实验部分 | 第54-57页 |
2.2.1 试剂和药品 | 第54页 |
2.2.2 稀土上转换发光纳米晶的制备,水溶性改性 | 第54-55页 |
2.2.3 表征 | 第55页 |
2.2.4 上转换量子效率测试 | 第55-56页 |
2.2.5 细胞培养 | 第56页 |
2.2.6 细胞毒性试验 | 第56页 |
2.2.7 稀土上转换纳米晶标记细胞及成像实验 | 第56-57页 |
2.2.8 动物 | 第57页 |
2.2.9 cit-Lu6-Tm和cit-Y1-Tm黑鼠成像 | 第57页 |
2.2.10 细胞转移的体内跟踪 | 第57页 |
2.3 结果与讨论 | 第57-69页 |
2.3.1 油胺配位的稀土上转换纳米晶的制备与表征 | 第57-61页 |
2.3.2 油胺包裹的稀土上转换发光纳米晶的发光性质 | 第61-65页 |
2.3.3 Lu6-Tm的水溶性改性及细胞成像 | 第65-67页 |
2.3.4 基于NaLuF_4的Tm掺杂的UCNPs用于动物活体成像 | 第67-69页 |
2.4 本章小结 | 第69页 |
参考文献 | 第69-75页 |
第三章 通过主客体间相互作用构建水溶性上转换纳米晶 | 第75-102页 |
3.1 引言 | 第75-76页 |
3.2 实验部分 | 第76-81页 |
3.2.1 试剂和药品 | 第76-77页 |
3.2.2 实验仪器和方法 | 第77页 |
3.2.3 金刚烷酸为配体的上转换发光纳米晶(UCNPs-Ad)的合成 | 第77页 |
3.2.4 金刚烷酸为配体的下转换发光纳米晶(DCNPs-Ad)的合成 | 第77页 |
3.2.5 不掺杂的稀土纳米晶(RENPs-Ad)的合成 | 第77页 |
3.2.6 转换油溶性UCNPs-Ad为水溶性UCNPs-Ad/β-CD | 第77-78页 |
3.2.7 热分解法合成油酸稳定的NaYF_4:20mol%Yb,2mol%Er(记为UCNP-OAA~T) | 第78页 |
3.2.8 溶剂热法合成油酸稳定的NaYF_4:20mol%Yb,2mol%Er(记为UCNP-OA~S) | 第78页 |
3.2.9 水热法合成油酸稳定的NaYF_4:20mol%Yb,2mol%Er(记为UCNP-OA~H) | 第78-79页 |
3.2.10 疏水性UCNP转换成相应的亲水性样品 | 第79页 |
3.2.11 UCNP(Tm)-OA~T负载Os(Ⅱ)配合物 | 第79页 |
3.2.12 合成18F标记的UCNP(Tm)-OA-CD~T | 第79页 |
3.2.13 细胞培养 | 第79页 |
3.2.14 细胞毒性试验 | 第79-80页 |
3.2.15 活细胞染色和共聚焦成像 | 第80-81页 |
3.2.16 上转换发光的小鼠活体成像 | 第81页 |
3.2.17 生物分布和PET活体成像 | 第81页 |
3.3 UCNPs-Ad/β-CD结果与讨论 | 第81-88页 |
3.3.1 UCNPs-Ad/β-CD的合成和表征 | 第81-84页 |
3.3.2 UCNPs-Ad/β-CD的上转换发光光谱 | 第84-86页 |
3.3.3 UCNPs-Ad/β-CD应用于细胞成像 | 第86-88页 |
3.4 UCNP-OA-CD结果与讨论 | 第88-99页 |
3.4.1 UCNP-OA-CD的合成与表征 | 第88-93页 |
3.4.2 活细胞与UCNP-OA-CD~T的相互作用 | 第93-95页 |
3.4.3 UCNP(Tm)-OA-CD~T负载油溶性染料锇配合物并用于生物成像 | 第95-96页 |
3.4.5 小动物全身上转换发光成像 | 第96-97页 |
3.4.6 上转换发光活体淋巴成像 | 第97-98页 |
3.4.7 生物分布和活体PET成像 | 第98-99页 |
3.5 本章小结 | 第99页 |
参考文献 | 第99-102页 |
第四章 钌配合物组装的纳米复合体用于高效上转换发光的Hg~(2+)传感器及生物成像 | 第102-119页 |
4.1 引言 | 第102-103页 |
4.2 实验部分 | 第103-105页 |
4.2.1 试剂和药品 | 第103页 |
4.2.2 实验仪器和方法 | 第103-104页 |
4.2.3 油胺配位的UCNPs的合成(OM-UCNPs) | 第104页 |
4.2.4 UCNPs表面组装配合物N719(N719-UCNPs) | 第104页 |
4.2.5 PAA包覆的UCNPs合成(PAA-UCNPs) | 第104页 |
4.2.6 平均分子重量和配体N719装载数目计算 | 第104页 |
4.2.7 N719-UCNPs的光谱测试和金属离子滴定 | 第104-105页 |
4.2.8 细胞培养 | 第105页 |
4.2.9 细胞毒性 | 第105页 |
4.2.10 上转换发光成像 | 第105页 |
4.3 结果与讨论 | 第105-115页 |
4.3.1 Hg~(2+)UCL纳米传感器的设计原理 | 第105-106页 |
4.3.2 OM-UCNPs和N719-UCNPs的表征 | 第106-110页 |
4.3.3 N719-UCNPs的Hg~(2+)传感能力 | 第110-114页 |
4.3.4 活细胞中感应Hg~(2+) | 第114-115页 |
4.4 本章小结 | 第115页 |
参考文献 | 第115-119页 |
第五章 稀土阳离子辅助的配体组装构建18F标记的磁性上转换发光纳米晶 | 第119-141页 |
5.1 引言 | 第119-120页 |
5.2 实验部分 | 第120-124页 |
5.2.1 试剂和药品 | 第120-121页 |
5.2.2 实验仪器和方法 | 第121页 |
5.2.3 油胺配位的UCNPs的合成(OM-UCNPs) | 第121页 |
5.2.4 Gd~(3+)包覆的UCNPs的合成(Gd-UCNPs) | 第121-122页 |
5.2.5 羧酸配体组装(AA/OA/FA-Gd-UCNPs,FA-AA-Gd-UCNPs) | 第122页 |
5.2.6 18F标记的AA-Gd-UCNPs的合成(18F-AA-Gd-UCNPs) | 第122页 |
5.2.7 细胞培养 | 第122页 |
5.2.8 FA-AA-Gd-UCNPs的细胞毒性 | 第122页 |
5.2.9 细胞染色 | 第122-123页 |
5.2.10 FA-AA-Gd-UCNPs孵育的活细胞共聚焦成像 | 第123页 |
5.2.11 上转换发光活体成像 | 第123页 |
5.2.12 体外弛豫率测试 | 第123页 |
5.2.13 磁共振活体成像 | 第123-124页 |
5.2.14 PET活体成像和离体组织分布 | 第124页 |
5.3 结果与讨论 | 第124-135页 |
5.3.1 纳米晶的表征 | 第124-125页 |
5.3.2 表面修饰的表征 | 第125-129页 |
5.3.3 上转换发光 | 第129-130页 |
5.3.4 细胞毒性和细胞成像 | 第130-132页 |
5.3.5 活体上转换发光成像 | 第132-133页 |
5.3.6 弛豫率测试和活体磁共振成像 | 第133-134页 |
5.3.7 PET活体成像 | 第134-135页 |
5.4 本章小结 | 第135-136页 |
参考文献 | 第136-141页 |
第六章 低功率激发的基于三线态-三线态湮灭的上转换发光应用至活体成像 | 第141-156页 |
6.1 引言 | 第141-142页 |
6.2 实验部分 | 第142-144页 |
6.2.1 试剂和药品 | 第142页 |
6.2.2 实验仪器和方法 | 第142-143页 |
6.2.3 TTA-UCNP的合成 | 第143页 |
6.2.4 上转换量子效率的测定 | 第143页 |
6.2.5 细胞培养 | 第143页 |
6.2.6 细胞毒性 | 第143-144页 |
6.2.7 细胞染色 | 第144页 |
6.2.8 共聚焦细胞成像 | 第144页 |
6.2.9 活体成像 | 第144页 |
6.3 结果与讨论 | 第144-152页 |
6.3.1 TTA-UCNP的合成和表征 | 第145-147页 |
6.3.2 TTA-UCNP的上转换发光性质 | 第147-148页 |
6.3.3 细胞毒性及共聚焦成像 | 第148-151页 |
6.3.4 TTA-UCNP用于活体成像 | 第151-152页 |
6.4 本章小结 | 第152页 |
参考文献 | 第152-156页 |
第七章 水溶性的基于三线态-三线态湮灭的上转换纳米胶囊 | 第156-179页 |
7.1 引言 | 第156-157页 |
7.2 实验部分 | 第157-159页 |
7.2.1 试剂和药品 | 第157页 |
7.2.2 实验仪器和方法 | 第157-158页 |
7.2.3 TTA-UCL纳米胶囊的合成 | 第158页 |
7.2.4 SiO_2包覆的TTA-UCL纳米材料的合成 | 第158-159页 |
7.2.5 上转换量子效率的测定 | 第159页 |
7.2.6 穿透深度的研究 | 第159页 |
7.2.7 绿光和黄光发射的TTA-UCL纳米胶囊用于活体成像 | 第159页 |
7.3 结果与讨论 | 第159-175页 |
7.3.1 SiO_2包覆的TTA-UCL体系的发光性质 | 第160-162页 |
7.3.2 TTA-UCL体系在大豆油中的光物理性质 | 第162-168页 |
7.3.3 TTA-UCL纳米胶囊的表征 | 第168-170页 |
7.3.4 TTA-UCL纳米胶囊的光物理性质 | 第170-172页 |
7.3.5 TTA-UCL纳米胶囊穿透深度的研究 | 第172-173页 |
7.3.6 TTA-UCL纳米胶囊应用于活体成像 | 第173-175页 |
7.4 本章小结 | 第175页 |
参考文献 | 第175-179页 |
第八章 光稳定性增强的近红外激发的基于三线态-三线态湮灭上转换体系的构建 | 第179-192页 |
8.1 引言 | 第179-181页 |
8.2 实验部分 | 第181-182页 |
8.2.1 试剂和药品 | 第181页 |
8.2.2 实验仪器和方法 | 第181页 |
8.2.3 TTA-UCL纳米胶囊的合成 | 第181-182页 |
8.2.4 上转换量子效率的测定 | 第182页 |
8.3 结果与讨论 | 第182-190页 |
8.3.1 PdPC(OBu)_8&BPEN在甲苯中的光物理性质 | 第182-184页 |
8.3.2 PdPC(OBu)_8&BPEN在不同溶剂中的光稳定性以及上转换发光 | 第184-187页 |
8.3.3 上转换发光纳米胶囊UCNC-O的结构表征 | 第187-189页 |
8.3.4 UCNC-O的上转换发光性质及光稳定性 | 第189-190页 |
8.4 本章小结 | 第190页 |
参考文献 | 第190-192页 |
第九章 近红外激发和发射的基于三线态-三线态湮灭的上转换发光及其应用于光动力学治疗的探索 | 第192-200页 |
9.1 引言 | 第192-193页 |
9.2 实验部分 | 第193-194页 |
9.2.1 试剂和药品 | 第193页 |
9.2.2 实验仪器和方法 | 第193页 |
9.2.3 纳米胶囊的合成 | 第193-194页 |
9.2.4 上转换量子效率的测定 | 第194页 |
9.2.5 UCNC-Ce6单线态氧产生的测定 | 第194页 |
9.3 结果与讨论 | 第194-197页 |
9.3.1 PdPC(OBu)_8&TBI在大豆油中的光物理性质 | 第195-197页 |
9.3.2 UCNC-Ce6单线态氧产生的测定 | 第197页 |
9.4 本章小结和展望 | 第197-198页 |
参考文献 | 第198-200页 |
第十章 论文主要结论 | 第200-202页 |
攻读博士学位期间论文发表情况 | 第202-205页 |
致谢 | 第205-207页 |