| 中文摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 符号说明 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 材料和方法 | 第16-25页 |
| 1 主要仪器 | 第16-17页 |
| 2 材料 | 第17-18页 |
| 2.1 试剂 | 第17-18页 |
| 2.2 实验动物 | 第18页 |
| 3 实验方法 | 第18-23页 |
| 3.1 实验动物分组 | 第18-19页 |
| 3.2 实验动物处理 | 第19页 |
| 3.3 颞下颌关节的制备与保存 | 第19-20页 |
| 3.4 HE染色、番红-0染色和髁突表面大体观察 | 第20-21页 |
| 3.5 实时定量PCR | 第21-23页 |
| 3.6 免疫组织化学染色 | 第23页 |
| 4 实验数据整理与统计学分析 | 第23-25页 |
| 结果 | 第25-37页 |
| 1 Wistar大鼠TMJOA模型的成功建立 | 第25页 |
| 2 各组大鼠TMJ HE、番红-0染色和大体观察情况 | 第25-28页 |
| 3 实时定量PCR测定SDF-1、CXCR4、MMP-3和MMP-9 mRNA表达情况 | 第28-30页 |
| 3.1 SDF-1与CXCR4 mRNA | 第28页 |
| 3.2 MMP-3和MMP-9 mRNA | 第28-30页 |
| 4 SDF-1、CXCR4、MMP-3、MMP-9和p-ERK免疫组化染色结果 | 第30-35页 |
| 4.1 SDF-1和CXCR4 | 第30-31页 |
| 4.2 MMP-3和MMP-9 | 第31-33页 |
| 4.3 p-ERK | 第33-35页 |
| 5 MMP-3和MMP-9与p-ERK相关性分析 | 第35-37页 |
| 讨论 | 第37-41页 |
| 1 TMJOA模型的建立 | 第37-38页 |
| 2 TMJOA病理改变 | 第38页 |
| 3 SDF-1/CXCR4信号轴特异性拮抗剂AMD3100 | 第38-39页 |
| 4 SDF-1/CXCR4信号轴与TMJOA | 第39-40页 |
| 5 TMJOA大鼠体内SDF-1/CXCR4信号轴与ERK信号通路 | 第40-41页 |
| 结论与展望 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第49-50页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第50页 |
