| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 材料和方法 | 第14-23页 |
| 1. 材料 | 第14-16页 |
| 1.1 实验仪器 | 第14页 |
| 1.2 主要试剂 | 第14-15页 |
| 1.3 试验用主要试剂的配制 | 第15-16页 |
| 1.4 其他试剂及材料 | 第16页 |
| 2. 方法 | 第16-22页 |
| 2.1 RA患者外周血血清的提取 | 第16页 |
| 2.2 外周血单个核细胞的分离 | 第16-17页 |
| 2.3 滑膜成纤维细胞的提取 | 第17页 |
| 2.4 细胞培养 | 第17-18页 |
| 2.5 细胞处理 | 第18-19页 |
| 2.6 RA-PCR检测 | 第19-20页 |
| 2.7 ELISA检测培养液中炎性因子水平 | 第20-21页 |
| 2.8 流式检测 | 第21-22页 |
| 2.9 蛋白芯片分析 | 第22页 |
| 3. 统计学分析 | 第22-23页 |
| 结果 | 第23-32页 |
| 1. RA患者血清中TL1A水平增高 | 第23-24页 |
| 2. TL1A刺激RA FLS分泌IL-6 和PGE2 | 第24-26页 |
| 3. TL1A通过NFκB、JNK信号通路刺激RA FLS促进IL-6分泌 | 第26-27页 |
| 4. RA FLS中不表达DR3 | 第27页 |
| 5. TL1A与TNFR2结合作用于RA FLS促进IL-6 分泌 | 第27-28页 |
| 6. TL1A促进RA FLS分泌IL-6 上调PBMC中Th17比例 | 第28-29页 |
| 7. 蛋白芯片分析 | 第29-32页 |
| 讨论 | 第32-36页 |
| 结论 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-43页 |
| 综述 | 第43-54页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
