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小麦逆境胁迫响应基因Tamyb01和Tapp2c01的克隆及功能验证

致谢第4-9页
摘要第9-11页
1 文献综述第11-20页
    1.1 非生物胁迫对植物生长的影响第11-12页
        1.1.1 干旱胁迫对植物的影响第11页
        1.1.2 盐胁迫对植物生长的影响第11-12页
        1.1.3 低温胁迫对植物生长的影响第12页
        1.1.4 高温胁迫对植物生长的影响第12页
    1.2 植物对逆境胁迫应答的分子机制第12-14页
        1.2.1 功能基因第13页
        1.2.2 调控基因第13-14页
    1.3 植物MYB类转录因子第14-15页
        1.3.1 MYB类转录因子的结构、分类第14-15页
        1.3.2 MYB类转录因子的功能第15页
            1.3.2.1 调控植物生长发育过程第15页
            1.3.2.2 参与非生物胁迫的调控作用第15页
    1.4 蛋白磷酸酶(PP2C)第15-17页
        1.4.1 蛋白磷酸酶(PP2C)的研究进展第15-16页
        1.4.2 蛋白磷酸酶的结构和分类第16页
        1.4.3 蛋白磷酸酶PP2C的功能第16-17页
            1.4.3.1 参与ABA信号转导途径第16-17页
            1.4.3.2 参与植物逆境胁迫下信号转导的调控第17页
    1.5 VIGS技术的应用第17-20页
        1.5.1 VIGS技术的建立与发展第17-18页
        1.5.2 VIGS技术的机制第18页
        1.5.3 VIGS技术的优缺点第18-20页
2 引言第20-21页
3 材料与方法第21-34页
    3.1 材料第21-23页
        3.1.1 植物材料第21页
        3.1.2 转化菌株与质粒载体第21页
        3.1.3 分子生物学试剂及仪器第21页
        3.1.4 培养基的配制第21-22页
            3.1.4.1 LB培养基和YEB培养基的配制第21-22页
            3.1.4.2 MS培养基的配制第22页
        3.1.5 PCR引物第22-23页
    3.2 实验方法第23-31页
        3.2.1 实验材料处理第23页
            3.2.1.1 非生物胁迫基因表达分析试验材料处理第23页
            3.2.1.2 BSMV病毒沉默材料的处理第23页
            3.2.1.3 拟南芥的种植第23页
        3.2.2 目的基因片段的克隆第23-27页
            3.2.2.1 植物基因组DNA的提取与质量检测第23-25页
            3.2.2.2 目的基因的克隆第25页
            3.2.2.3 PCR扩增产物的回收与纯化第25-26页
            3.2.2.4 重组载体的转化第26页
            3.2.2.5 阳性单克隆的筛选鉴定第26页
            3.2.2.6 阳性重组质粒提取第26-27页
            3.2.2.7 阳性重组子的质粒酶切鉴定第27页
            3.2.2.8 阳性重组子质粒测序及序列分析第27页
        3.2.3 目的基因的表达特性分析第27-29页
            3.2.3.1 RNA的提取和纯化第27-28页
            3.2.3.2 cDNA第一链的合成第28-29页
            3.2.3.3 荧光定量RT-PCR第29页
            3.2.3.4 生物信息学分析方法第29页
        3.2.4 过表达载体构建及遗传转化第29-31页
            3.2.4.1 过表达载体的构建第29-30页
            3.2.4.2 重组载体在农杆菌感受态细胞中的转化第30页
            3.2.4.3 花絮侵染法转化拟南芥第30页
            3.2.4.4 转基因拟南芥T0代种子的筛选鉴定第30页
            3.2.4.5 转基因T3代拟南芥干旱胁迫处理第30-31页
            3.2.4.6 小麦的遗传转化第31页
    3.3 BSMV病毒沉默载体构建第31-34页
        3.3.1 BSMV重组载体构建第31页
        3.3.2 BSMV重组载体的线性化第31-32页
        3.3.3 BSMV体外转录产生病毒第32-33页
        3.3.4 小麦材料的准备与接种第33-34页
            3.3.4.1 BSMV病毒接种混合液的制备第33页
            3.3.4.2 小麦材料的准备与接种第33-34页
            3.3.4.3 基因表达量检测及表型分析第34页
            3.3.4.4 生理指标测定第34页
4 结果与分析第34-54页
    4.1 RNA提取、纯化与第一链合成检测第34-35页
    4.2 Tapp2c01基因的克隆及表达特性分析第35-42页
        4.2.1 Tapp2c01基因的克隆及序列分析第35-36页
        4.2.2 不同物种Tapp2c01基因编码氨基酸序列比对及遗传进化分析第36-38页
        4.2.3 Tapp2c01的二级结构预测第38-39页
        4.2.4 干旱胁迫下Tapp2c01基因在小麦不同部位的表达特征性分析第39-41页
        4.2.5 ABA、低温、高盐胁迫下Tapp2c01基因的表达特性分析第41-42页
    4.3 Tamyb01基因的克隆及表达特性分析第42-48页
        4.3.1 Tamyb01基因的克隆及序列分析第42-43页
        4.3.2 不同物种Tamyb01基因编码氨基酸序列比对及遗传进化分析第43-45页
        4.3.3 Tamyb01的二级结构预测第45-46页
        4.3.4 盐胁迫下Tamyb01基因在小麦不同部位的表达特性分析第46-48页
    4.4 BSMV-VIGS载体构建、接种及表型观察第48-52页
        4.4.1 目的基因的克隆第48页
        4.4.2 目的片段的酶切第48-49页
        4.4.3 BSMV-γ 重组载体的酶切验证第49页
        4.4.4 BSMV载体的线性化第49-50页
        4.4.5 BSMV载体的体外转录第50页
        4.4.6 病毒接种后的表型观察第50-51页
        4.4.7 病毒接种后目的基因表达量检测第51页
        4.4.8 叶绿素及MDA含量的变化第51-52页
    4.5 TAPP2C01基因过表达载体构建及遗传转化第52-54页
        4.5.1 Tapp2c01过表达载体的构建第52-53页
        4.5.2 过表达载体pCAMBIA1304-Tapp2c01的遗传转化第53页
        4.5.3 转基因拟南芥T0代种子的筛选第53页
        4.5.4 转基因拟南芥抗干旱胁迫鉴定和基因的表达分析第53-54页
        4.5.5 农杆菌介导的小麦茎尖遗传转化第54页
5 结论与讨论第54-58页
    5.1 转录组测序技术为发掘新基因提供了技术支撑第54-56页
    5.2 非生物胁迫下基因的表达特征性分析第56页
    5.3 基因功能的初步验证第56-58页
参考文献第58-68页
ABSTRACT第68-69页

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