| 中文摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 英文缩写词表 | 第17-19页 |
| 第一章 绪论 | 第19-23页 |
| 第二章 综述 | 第23-49页 |
| 2.1 动脉粥样硬化斑块易损机制及其治疗进展 | 第23-35页 |
| 2.1.1 易损斑块定义 | 第24页 |
| 2.1.2 易损斑块的特点 | 第24-25页 |
| 2.1.3 动脉粥样硬化斑块易损机制 | 第25-28页 |
| 2.1.4 影像检查在易损斑块诊断中的作用 | 第28-32页 |
| 2.1.5 治疗进展 | 第32-35页 |
| 2.1.6 结语 | 第35页 |
| 2.2 炎性标记物与易损斑块的研究进展 | 第35-41页 |
| 2.2.1 C-反应蛋白与高敏C-反应蛋白 | 第35-37页 |
| 2.2.2 妊娠相关性蛋白-A(pregnancyassociated plasma protein-A,PAPP-A) | 第37-38页 |
| 2.2.3 白介素(interleukin,IL) | 第38-39页 |
| 2.2.4 氧化型低密度脂蛋白(oxidized low densitylipoprotein,ox-LDL) | 第39-40页 |
| 2.2.5 可溶性CD40和CD40L | 第40页 |
| 2.2.6 其他 | 第40-41页 |
| 2.2.7 结语 | 第41页 |
| 2.3 基质金属蛋白酶及其抑制剂在动脉粥样硬化斑块进展和斑块破裂中的作用 | 第41-49页 |
| 2.3.1 MMPs成员及基本结构 | 第41-42页 |
| 2.3.2 MMPs的生物学特性 | 第42页 |
| 2.3.3 调控MMPs的表达与活性 | 第42-44页 |
| 2.3.4 MMPs在动脉粥样硬化中的作用 | 第44-48页 |
| 2.3.5 结语与展望 | 第48-49页 |
| 第三章 MMP-9基因RNAI慢病毒载体的构建与鉴定 | 第49-63页 |
| 3.1 材料和方法 | 第51-56页 |
| 3.1.1 主要材料与试剂 | 第51-52页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第52-56页 |
| 3.2 结果 | 第56-59页 |
| 3.2.1 12%PAGE检测MMP-9双链DNA形成效率 | 第56-57页 |
| 3.2.2 双酶切pGCL-GFP载体后PAGE电泳结果如图3.3 | 第57页 |
| 3.2.3 阳性克隆的PCR鉴定 | 第57页 |
| 3.2.4 重组质粒测序鉴定 | 第57-58页 |
| 3.2.5 携带MMP-9慢病毒重组体的鉴定 | 第58-59页 |
| 3.3 讨论 | 第59-61页 |
| 3.4 小结 | 第61-63页 |
| 第四章 小鼠基质金属蛋白酶-9RNA干扰慢病毒载体在体外的沉默效应 | 第63-75页 |
| 4.1 材料和方法 | 第63-66页 |
| 4.1.1 主要材料与试剂 | 第63-64页 |
| 4.1.2 实验方法 | 第64-66页 |
| 4.2 结果 | 第66-71页 |
| 4.2.1 293T细胞中利用Western blot鉴定慢病毒介导的RNAi | 第66-67页 |
| 4.2.2 Real-time PCR检测NIH3T3细胞和Raw26细胞中MMP-9 mRNA的干扰作用 | 第67-70页 |
| 4.2.3 NIH3T3细胞和Raw264.7细胞感染病毒的荧光观察 | 第70-71页 |
| 4.3 讨论 | 第71-73页 |
| 4.4 小结 | 第73-75页 |
| 第五章 慢病毒介导的MMP-9 RNA干扰对APOE-/-小鼠动脉粥样硬化的影响 | 第75-87页 |
| 5.1 材料与方法 | 第76-79页 |
| 5.1.1 主要材料 | 第76-77页 |
| 5.1.2 实验方法 | 第77-79页 |
| 5.1.3 统计学分析 | 第79页 |
| 5.2 结果 | 第79-82页 |
| 5.2.1 一般资料 | 第79页 |
| 5.2.2 显微镜下所见各组ApoE-/-小鼠主动脉粥样硬化病变 | 第79-81页 |
| 5.2.3 免疫组织化学染色比较ApoE-/-小鼠主动脉粥样硬化斑块MMP-9和SM-actin抗原免疫活性 | 第81-82页 |
| 5.2.4 三组血清MMP-9和hs-CRP水平变化 | 第82页 |
| 5.3 讨论 | 第82-84页 |
| 5.4 小结 | 第84-87页 |
| 第六章 结论 | 第87-89页 |
| 参考文献 | 第89-105页 |
| 在学期间所取得的科研成果 | 第105-107页 |
| 致谢 | 第107页 |
