摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-7页 |
英文缩略表 | 第10-11页 |
引言 | 第11-14页 |
第1章 实验研究 | 第14-43页 |
1.1 材料与方法 | 第14-24页 |
1.1.1 实验动物 | 第14页 |
1.1.2 主要试剂 | 第14-15页 |
1.1.3 主要仪器及设备 | 第15-16页 |
1.1.4 实验用溶液及配制 | 第16-17页 |
1.1.5 实验方法 | 第17-23页 |
1.1.6 统计学分析 | 第23-24页 |
1.2 结果 | 第24-33页 |
1.2.1 倒置相差显微镜下hUCMSCs表面形态 | 第24页 |
1.2.2 hUCMSCs流式细胞仪鉴定结果 | 第24-25页 |
1.2.3 扫描电镜结果 | 第25页 |
1.2.4 Micro CT检测结果 | 第25-27页 |
1.2.5 HE、改良Masson三色染色结果 | 第27-29页 |
1.2.6 免疫组织化学(IHC)染色结果 | 第29-33页 |
1.3 讨论 | 第33-39页 |
1.4 结论 | 第39页 |
参考文献 | 第39-43页 |
第2章 综述 白藜芦醇对间充质干细胞骨修复作用的研究现状 | 第43-52页 |
2.1 引言 | 第43页 |
2.2 RSV通过MAPK/ERK1/2信号通路对MSCs骨修复作用的影响 | 第43-44页 |
2.2.1 MAPK/ERK1/2信号通路 | 第43-44页 |
2.2.2 RSV通过MAPK/ERK1/2信号通路对MSCs骨修复作用的影响 | 第44页 |
2.3 RSV通过Wnt/β-catenin信号通路对MSCs骨修复作用的影响 | 第44-45页 |
2.3.1 Wnt/β-catenin信号通路 | 第44页 |
2.3.2 RSV通过ERK1/2通路影响Wnt/β-catenin成骨分化 | 第44-45页 |
2.3.3 RSV通过激活Sirt1影响Wnt/β-catenin成骨分化 | 第45页 |
2.4 RSV通过激活SIRT1/RUNX2和抑制PPAR-γ影响MSCs骨修复 | 第45-47页 |
2.4.1 RSV通过激活SIRT1影响成骨分化 | 第45-46页 |
2.4.2 RSV通过激活RUNX2影响成骨分化 | 第46页 |
2.4.3 RSV通过抑制PPAR-γ来影响成骨分化 | 第46-47页 |
2.5 RSV抗炎与MSCs骨修复 | 第47-48页 |
2.5.1 炎性微环境与MSCs成骨 | 第47页 |
2.5.2 RSV的抗炎作用与MSCs骨修复 | 第47-48页 |
结论 | 第48页 |
参考文献 | 第48-52页 |
结论 | 第52-53页 |
致谢 | 第53-54页 |
导师简介 | 第54-56页 |
作者简介 | 第56-57页 |
学位论文数据集 | 第57页 |