摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
1 引言 | 第11-18页 |
1.1 植物花发育的分子调控机理研究进展 | 第11-15页 |
1.1.1 植物花器官形态建成的分子调控机理 | 第11-12页 |
1.1.2 AP3 同源基因的分子调控机理 | 第12-15页 |
1.2 木兰科植物花发育研究现状 | 第15-16页 |
1.3 本论文的研究目的、意义和技术路线 | 第16-18页 |
2 红花玉兰中两个 APETALA3 同源基因的克隆及序列分析 | 第18-36页 |
2.1 材料与方法 | 第18-19页 |
2.1.1 植物材料 | 第18页 |
2.1.2 仪器和试剂 | 第18-19页 |
2.2 方法 | 第19-31页 |
2.2.1 红花玉兰总 RNA 的提取 | 第19-20页 |
2.2.2 第一链 cDNA 的合成 | 第20-21页 |
2.2.3 红花玉兰 AP3(APETALA3)同源基因的克隆 | 第21-30页 |
2.2.4 红花玉兰 MAwuAP3_1/2 基因的序列比对和多样性分析 | 第30-31页 |
2.3 结果与分析 | 第31-36页 |
2.3.1 红花玉兰的 total RNA 质量检测与分析 | 第31页 |
2.3.2 红花玉兰 MAwuAP3_1 和 MAwuAP3_2 基因的克隆 | 第31-33页 |
2.3.3 MAwuAP3_1 和 MAwuAP3_2 的蛋白比对和系统发生分析 | 第33-36页 |
2.4 讨论 | 第36页 |
3 红花玉兰中的两个 AP3(APETALA3)同源基因的表达模式分析 | 第36-45页 |
3.1 试验所需材料 | 第36-38页 |
3.1.1 植物材料 | 第36-37页 |
3.1.2 试验试剂 | 第37页 |
3.1.3 试验仪器 | 第37-38页 |
3.1.4 引物合成与 DNA 测序 | 第38页 |
3.2 方法 | 第38-42页 |
3.2.1 试剂盒提取红花玉兰各器官的总 RNA | 第38-39页 |
3.2.2 红花玉兰 cDNA 的逆转录合成 | 第39-40页 |
3.2.3 红花玉兰半定量 RT-PCR 的引物设计与合成 | 第40页 |
3.2.4 红花玉兰 MAwuAP3_1/2 的半定量 RT-PCR | 第40页 |
3.2.5 实时荧光定量 PCR 对 MAwuAP3_1/2 的表达模式分析 | 第40-42页 |
3.3 结果与分析 | 第42-45页 |
3.3.1 红花玉兰 MAwuAP3_1/2 基因在不同花器官中的表达特异性分析 | 第42-45页 |
3.4 讨论 | 第45页 |
4 红花玉兰 AP3(APETALA3)同源基因的功能分析 | 第45-66页 |
4.1 试验材料 | 第45-46页 |
4.1.1 植物材料 | 第45页 |
4.1.2 仪器和试剂 | 第45-46页 |
4.1.3 菌株和载体 | 第46页 |
4.1.4 所用培养基及抗生素 | 第46页 |
4.2 方法 | 第46-54页 |
4.2.1 MAwuAP3_1/ 2 基因转基因载体的构建 | 第46-48页 |
4.2.2 目的基因表达载体导入农杆菌感受态细胞中 | 第48-50页 |
4.2.3 含有目的基因 MAwuAP3_1 和 MAwuAP3_2 的农杆菌介导的拟南芥转化 | 第50-52页 |
4.2.4 转基因拟南芥的阳性种子的筛选 | 第52-53页 |
4.2.5 转基因阳性拟南芥的 PCR 鉴定 | 第53-54页 |
4.2.6 MAwuAP3_1 和 MAwuAP3_2 的转基因拟南芥的表型分析 | 第54页 |
4.3 结果与分析 | 第54-65页 |
4.3.1 MAwuAP3_1/2 基因的过表达载体构建 | 第54-56页 |
4.3.2 含 MAwuAP3_1/2 基因的农杆菌介导的拟南芥转化 | 第56-59页 |
4.3.3 MAwuAP3_1 和 MAwuAP3_2 基因的转基因拟南芥鉴定 | 第59-61页 |
4.3.4 MAwuAP3_1 和 MAwuAP3_2 基因在 ap3-3 拟南芥中功能分析 | 第61-63页 |
4.3.5 MAwuAP3_1/2 转基因拟南芥花器官的扫描电镜分析 | 第63-65页 |
4.4 讨论 | 第65-66页 |
5 结论和展望 | 第66-68页 |
5.1 结论 | 第66-67页 |
5.2 展望 | 第67-68页 |
参考文献 | 第68-72页 |
致谢 | 第72-73页 |
个人简介 | 第73页 |