| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 英文缩写注释表 | 第16-21页 |
| 1 研究背景 | 第21-24页 |
| 2 mip-2 siRNA序列的筛选 | 第24-48页 |
| 2.0 前言 | 第24-25页 |
| 2.1 实验仪器 | 第25-26页 |
| 2.2 材料与试剂 | 第26-28页 |
| 2.3 常用试剂的配制 | 第28-29页 |
| 2.4 实验方法 | 第29-36页 |
| 2.5 统计方法 | 第36-37页 |
| 2.6 结果 | 第37-45页 |
| 2.7 讨论 | 第45-48页 |
| 3 MIP-2抗体减轻炎症作用,并通过PI3K/AKTs、 JAK/STAT和P38-MAPK信号通路抑制LPS诱导的RAW264.7细胞HMGB1的释放 | 第48-72页 |
| 3.1 前言 | 第48-49页 |
| 3.2 材料与试剂 | 第49-51页 |
| 3.3 实验仪器 | 第51-52页 |
| 3.4 实验方法 | 第52-56页 |
| 3.5 统计方法 | 第56-57页 |
| 3.6 结果 | 第57-69页 |
| 3.6.1 细胞培养上清IL-6、 IL-1β和TNF-α的表达 | 第57-58页 |
| 3.6.2 细胞培养上清HMGB1的表达 | 第58页 |
| 3.6.3 细胞中HMGB1蛋白的表达 | 第58-59页 |
| 3.6.4 细胞中PI3K/AKTS信号通路蛋白的表达 | 第59-60页 |
| 3.6.5 细胞中JAK/STAT3信号通路蛋白的表达 | 第60-61页 |
| 3.6.6 细胞中MAPKs信号通路蛋白的表达 | 第61-63页 |
| 3.6.7 信号通路抑制剂下调细胞中HMGB1 以及细胞培养上清IL-6、IL-1β和TNF-α蛋白表达 | 第63-65页 |
| 3.6.8 经EP处理后细胞培养上清IL-6、IL-1β和TNF-α的表达 | 第65-67页 |
| 3.6.9 经MIP-2抗体处理后细胞培养上清IL-6、IL-1β和TNF-α的表达 | 第67-68页 |
| 3.6.10 经MIP-2抗体处理后细胞培养上清HMGB1的表达 | 第68-69页 |
| 3.7 讨论 | 第69-72页 |
| 4 小鼠源性重组MIP-2蛋白促炎作用的体外研究 | 第72-84页 |
| 4.1 前言 | 第72页 |
| 4.2 材料与试剂 | 第72-74页 |
| 4.3 实验仪器 | 第74-75页 |
| 4.4 实验方法 | 第75-79页 |
| 4.5 统计方法 | 第79页 |
| 4.6 结果 | 第79-81页 |
| 4.7 讨论 | 第81-84页 |
| 5 实验结论 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-102页 |
| 综述 | 第102-123页 |
| 参考文献 | 第113-123页 |
| 作者在学期间所取得的科研成果 | 第123页 |
