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miR-183靶向调控MTA1基因对骨肉瘤细胞增殖及迁移的影响

摘要第4-7页
Abstract第7-10页
1 引言第14-15页
2 材料第15-21页
    2.1 组织来源第15页
    2.2 细胞系来源第15页
    2.3 质粒第15-17页
    2.4. MTA1 3'UTR野生型与突变型基因扩增引物第17页
    2.5 试剂与仪器第17-19页
        2.5.1 试剂第17-18页
        2.5.2 仪器第18-19页
    2.6 常用试剂的配制第19-21页
        2.6.1 PBS缓冲液第19页
        2.6.2 胰蛋白酶消化液第19-20页
        2.6.3 电泳缓冲液(1×)的配制第20页
        2.6.4 转膜缓冲液(10×)的配制第20页
        2.6.5 TBS(10×)的配制第20页
        2.6.6 TBST(1×)的配制第20页
        2.6.7 封闭液的配制第20页
        2.6.8 1.5M Tris-Hcl(pH=8.8)与1M Tris-Hcl(pH=6.8)的配制第20页
        2.6.9 miR-183mimic与NC的稀释第20-21页
3 实验方法第21-34页
    3.1 实时荧光定量PCR检测标本中miR-183的表达第21-23页
        3.1.1 总RNA的提取第21页
        3.1.2 反转录合成cDNA第21-22页
        3.1.3 qPCR检测miR-183表达第22-23页
    3.2 标本中MTA1的表达检测第23-26页
        3.2.1 标本中MTA1 mRNA的表达检测第23-24页
        3.2.2 MTA1蛋白表达的检测第24-26页
    3.3 细胞中miR-183和MTA1 mRNA的表达第26-27页
        3.3.1 骨肉瘤细胞系MG63及正常人成骨细胞株hFOB1.19的培养第26页
        3.3.2 细胞中miR-183和MTA1 mRNA的表达第26页
        3.3.3 细胞转染第26-27页
        3.3.4 转染效率检测第27页
    3.4 细胞增殖第27页
    3.5 细胞侵袭第27-28页
    3.6 细胞迁移第28页
    3.7 细胞凋亡第28-29页
        3.7.1 双荧光流式细胞术检测细胞凋亡第28页
        3.7.2 TUNEL法检测细胞凋亡第28-29页
    3.8 Western blot检测MTA1蛋白的表达第29页
    3.9 靶基因预测第29页
    3.10 双荧光素酶报告第29-33页
        3.10.1 MTA1野生型及突变型pmirGlO载体构建第29-33页
        3.10.2 双荧光素酶报告检测第33页
    3.11 统计学分析第33-34页
4 实验结果第34-46页
    4.1 骨肉瘤组织中miR-183及MTA1的表达第34-35页
    4.2 正常成骨细胞与骨肉瘤细胞中miR-183和MTA1 mRNA的表达第35页
    4.3 骨肉瘤细胞系MG63转染效果检测第35-36页
    4.4 CCK-8检测miR-183对骨肉瘤细胞MG63增殖的影响第36-37页
    4.5 Transwell实验检测骨肉瘤细胞MG63侵袭情况第37-38页
    4.6 划痕实验检测骨肉瘤细胞MG63迁移情况第38页
    4.7 双荧光标记流式细胞术检测骨肉瘤MG63细胞凋亡的结果第38-40页
    4.8 Tunel检测转染后对骨肉瘤MG63细胞凋亡的影响第40-41页
    4.9 靶向MTA1基因的microRNA的预测第41页
    4.10 Western blot验证miR-183与MTA1的靶向作用第41-42页
    4.11 双荧光素酶报告实验验证miR-183与MTA1靶向作用第42-46页
        4.11.1 Pmir-Glo-MTA1重组报告基因载体的构建第42-45页
        4.11.2 双荧光素酶报告实验结果第45-46页
5 讨论第46-48页
6 结论第48-49页
参考文献第49-52页
综述第52-73页
    参考文献第65-73页
中英文缩略词表第73-74页
个人简历第74-75页
致谢第75页

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