| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6页 |
| 引言 | 第10-12页 |
| 1 研究内容和技术路线 | 第12-14页 |
| 1.1 研究内容 | 第12-13页 |
| 1.2 技术路线 | 第13-14页 |
| 2 材料与方法 | 第14-23页 |
| 2.1 实验材料 | 第14-19页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第14页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第14-16页 |
| 2.1.3 主要试剂及药品配置 | 第16-18页 |
| 2.1.4 主要实验仪器 | 第18-19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-23页 |
| 2.2.1 细胞冻存 | 第19页 |
| 2.2.2 细胞复苏 | 第19页 |
| 2.2.3 细胞培养和传代 | 第19-20页 |
| 2.2.4 免疫荧光染色观察细胞骨架MTs和RhoA蛋白 | 第20页 |
| 2.2.5 流式细胞仪测定细胞周期 | 第20页 |
| 2.2.6 Western-Blot测定RhoA蛋白和GTP-RhoA蛋白表达 | 第20-23页 |
| 3 实验结果 | 第23-30页 |
| 3.1 Taxol处理OS-RC-2细胞后诱导细胞周期阻滞 | 第23-24页 |
| 3.2 Taxol处理OS-RC-2细胞后诱导GTP-RhoA表达下降 | 第24-25页 |
| 3.3 Taxol处理OS-RC-2细胞后诱导MT聚合 | 第25-26页 |
| 3.4 Taxol诱导MT和RhoA并行一致的重新分布 | 第26-27页 |
| 3.5 破坏Taxol诱导的MT聚集对RhoA活性及细胞周期的影响 | 第27-28页 |
| 3.6 抑制GTP-RhoA对Taxol诱导的OS-RC-2细胞周期以及MT的影响 | 第28-30页 |
| 4 讨论 | 第30-32页 |
| 5 结论 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-35页 |
| 附录A 综述 | 第35-42页 |
| 参考文献 | 第39-42页 |
| 在学研究成果 | 第42-43页 |
| 致谢 | 第43页 |
