| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-17页 |
| 1.1 金银花叶的研究现状 | 第11页 |
| 1.2 金银花叶中的生物活性物质 | 第11-12页 |
| 1.2.1 黄酮类化合物 | 第11页 |
| 1.2.2 有机酸类 | 第11-12页 |
| 1.2.3 挥发性油类 | 第12页 |
| 1.2.4 无机元素 | 第12页 |
| 1.3 金银花叶的药理作用 | 第12-13页 |
| 1.3.1 抗氧化作用 | 第12页 |
| 1.3.2 抗菌、抗病毒作用 | 第12-13页 |
| 1.3.3 抗炎、解热作用 | 第13页 |
| 1.4 黄酮类化合物的研究概况 | 第13-15页 |
| 1.4.1 黄酮类化合物的结构及分类 | 第13-14页 |
| 1.4.2 黄酮类化合物的提取研究 | 第14页 |
| 1.4.3 黄酮类化合物的分离与纯化研究 | 第14-15页 |
| 1.4.4 黄酮类化合物的功效研究 | 第15页 |
| 1.5 课题研究的意义及主要研究内容 | 第15-17页 |
| 1.5.1 目的和意义 | 第15页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第15-16页 |
| 1.5.3 研究技术路线 | 第16-17页 |
| 第2章 金银花叶黄酮超声辅助提取工艺优化 | 第17-27页 |
| 2.1 引言 | 第17页 |
| 2.2 试验材料与设备 | 第17页 |
| 2.2.1 试验材料与试剂 | 第17页 |
| 2.2.2 试验仪器与设备 | 第17页 |
| 2.3 试验方法 | 第17-19页 |
| 2.4 结果与分析 | 第19-25页 |
| 2.4.1 标准曲线确定 | 第19页 |
| 2.4.2 单因素试验 | 第19-22页 |
| 2.4.3 金银花叶黄酮超声辅助提取工艺优化 | 第22-25页 |
| 2.4.4 提取工艺条件的验证 | 第25页 |
| 2.5 本章小结 | 第25-27页 |
| 第3章 金银花叶黄酮的纯化 | 第27-47页 |
| 3.1 引言 | 第27页 |
| 3.2 试验材料与设备 | 第27-28页 |
| 3.2.1 主要试验材料与试剂 | 第27页 |
| 3.2.2 主要试验仪器与设备 | 第27页 |
| 3.2.3 大孔吸附树脂的预处理 | 第27-28页 |
| 3.2.4 金银花叶黄酮的提取制备 | 第28页 |
| 3.3 大孔吸附树脂的静态吸附-解吸试验 | 第28-29页 |
| 3.3.1 评价指标的测定 | 第28页 |
| 3.3.2 树脂的吸附动力学研究 | 第28-29页 |
| 3.3.3 树脂的吸附热力学研究 | 第29页 |
| 3.4 NKA-Ⅱ树脂对金银花叶黄酮的动态吸附-解吸试验 | 第29页 |
| 3.5 金银花叶黄酮在NKA-Ⅱ树脂上纯化优化试验 | 第29-31页 |
| 3.5.1 吸附条件的优化 | 第29-30页 |
| 3.5.2 解吸条件的优化 | 第30-31页 |
| 3.6 结果与分析 | 第31-45页 |
| 3.6.1 树脂的筛选 | 第31页 |
| 3.6.2 树脂的吸附动力学及解吸动力学曲线 | 第31-32页 |
| 3.6.3 NKA-Ⅱ树脂的吸附动力学及吸附机理研究 | 第32-33页 |
| 3.6.4 NKA-Ⅱ树脂的吸附等温线及模型拟合研究 | 第33-35页 |
| 3.6.5 NKA-Ⅱ树脂的动态吸附单因素试验 | 第35-37页 |
| 3.6.6 NKA-Ⅱ树脂的动态解吸单因素试验 | 第37-39页 |
| 3.6.7 吸附工艺优化及模型的建立 | 第39-41页 |
| 3.6.8 解吸工艺优化及模型的建立 | 第41-44页 |
| 3.6.9 验证试验 | 第44-45页 |
| 3.7 本章小结 | 第45-47页 |
| 第4章 金银花叶黄酮的抗氧化性研究 | 第47-63页 |
| 4.1 引言 | 第47页 |
| 4.2 试验材料与设备 | 第47-48页 |
| 4.2.1 主要试验材料及试剂 | 第47页 |
| 4.2.2 主要试验仪器与设备 | 第47-48页 |
| 4.3 体外抗氧化 | 第48-49页 |
| 4.3.1 羟自由基清除率测定 | 第48页 |
| 4.3.2 超氧阴离子自由基清除率测定 | 第48页 |
| 4.3.3 DPPH自由基清除率测定 | 第48页 |
| 4.3.4 总还原力的测定 | 第48-49页 |
| 4.4 金银花叶黄酮对H_2O_2诱导RAW264.7 巨噬细胞损伤的保护作用 | 第49-50页 |
| 4.4.1 RAW264.7 细胞培养 | 第49页 |
| 4.4.2 H_2O_2诱发RAW264.7 细胞氧化损伤模型的建立 | 第49页 |
| 4.4.3 金银花叶黄酮剂量的筛选 | 第49页 |
| 4.4.4 细胞及细胞培养液中MDA、GSH、SOD、LDH水平的测定 | 第49-50页 |
| 4.5 金银花叶黄酮对D-半乳糖致衰老小鼠的抗氧化作用 | 第50-51页 |
| 4.5.1 小鼠的分组和处理 | 第50页 |
| 4.5.2 血清和组织样品的制备 | 第50页 |
| 4.5.3 小鼠体质量及脏器指数的测定 | 第50页 |
| 4.5.4 抗氧化指标的测定 | 第50-51页 |
| 4.6 数据分析 | 第51页 |
| 4.7 结果与分析 | 第51-61页 |
| 4.7.1 体外抗氧化结果 | 第51-53页 |
| 4.7.2 金银花叶黄酮对H_2O_2诱导RAW264.7 细胞损伤的保护作用 | 第53-56页 |
| 4.7.3 金银花叶黄酮对D-半乳糖致衰老小鼠的抗氧化作用 | 第56-61页 |
| 4.8 本章小结 | 第61-63页 |
| 第5章 结论与展望 | 第63-65页 |
| 5.1 结论 | 第63-64页 |
| 5.2 展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第72页 |
