| 中文摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1 文献综述 | 第10-17页 |
| 1.1 DMP1的基因结构 | 第10-12页 |
| 1.2 DMP1的理化性质 | 第12页 |
| 1.3 DMP1的活化片段 | 第12-13页 |
| 1.4 DMP1的分布定位 | 第13-14页 |
| 1.5 DMP1的生物学功能 | 第14-15页 |
| 1.6 DMP1的表达调控 | 第15-17页 |
| 2 前言 | 第17-19页 |
| 3 材料与方法 | 第19-39页 |
| 3.1 实验小鼠来源 | 第19页 |
| 3.2 小鼠颌下腺总RNA提取 | 第19-21页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第19页 |
| 3.2.2 主要实验仪器 | 第19页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第19-21页 |
| 3.3 Reverse transcription-polymerase chain reaction(RT-PCR) | 第21-22页 |
| 3.3.1 主要试剂 | 第21页 |
| 3.3.2 主要实验仪器 | 第21页 |
| 3.3.3 实验方法 | 第21-22页 |
| 3.4 Quantitative real time polymerase chain reaction(qRT-PCR) | 第22-23页 |
| 3.4.1 主要试剂 | 第22页 |
| 3.4.2 主要仪器 | 第22页 |
| 3.4.3 实验方法 | 第22-23页 |
| 3.5 小鼠颌下腺酸性蛋白质提取与分离 | 第23-25页 |
| 3.5.1 主要试剂 | 第23-24页 |
| 3.5.2 主要仪器 | 第24页 |
| 3.5.3 实验方法 | 第24-25页 |
| 3.6 SDS-PAGE和Western immunoblotting | 第25-28页 |
| 3.6.1 主要试剂 | 第25-26页 |
| 3.6.2 主要仪器 | 第26页 |
| 3.6.3 实验方法 | 第26-28页 |
| 3.7 免疫组化(immunohistochemistry,IHC) | 第28-30页 |
| 3.7.1 主要试剂 | 第28页 |
| 3.7.2 主要仪器 | 第28页 |
| 3.7.3 实验方法 | 第28-30页 |
| 3.8 原位杂交(in situ hybridization,ISH) | 第30-35页 |
| 3.8.1 主要试剂 | 第30-31页 |
| 3.8.2 主要仪器 | 第31-32页 |
| 3.8.3 实验方法 | 第32-35页 |
| 3.9 β-galactosidase(LacZ) expression assay | 第35-39页 |
| 3.9.1 主要试剂 | 第35-36页 |
| 3.9.2 主要仪器 | 第36页 |
| 3.9.3 实验方法 | 第36-39页 |
| 4 结果 | 第39-54页 |
| 4.1 DMP1 mRNA在小鼠颌下腺内的表达 | 第39-41页 |
| 4.1.1 RT-PCR | 第39页 |
| 4.1.2 qRT-PCR | 第39-41页 |
| 4.2 DMP1在小鼠颌下腺中的表达 | 第41-43页 |
| 4.2.1 小鼠颌下腺内的酸性非胶原蛋白 | 第41-42页 |
| 4.2.2 DMP1-C和DMP1-N在小鼠颌下腺中的表达 | 第42-43页 |
| 4.3 DMP1-C和DMP1-N在小鼠颌下腺内的定位 | 第43-50页 |
| 4.3.1 DMP1-C在小鼠颌下腺内的定位 | 第44-48页 |
| 4.3.2 DMP1-N在小鼠颌下腺内的定位 | 第48-50页 |
| 4.4 DMP1在雄性小鼠颌下腺GCT中的定位 | 第50-54页 |
| 4.4.1 原位杂交 | 第50-51页 |
| 4.4.2 β-galactosidase(LacZ) expression assay | 第51-54页 |
| 5 讨论 | 第54-64页 |
| 5.1 DMP1在小鼠颌下腺中的表达 | 第54-56页 |
| 5.2 DMP1在小鼠颌下腺中的存在形式 | 第56-58页 |
| 5.3 DMP1在小鼠颌下腺中的定位 | 第58-61页 |
| 5.4 DMP1在雄性小鼠颌下腺GCT中的表达 | 第61-64页 |
| 6 结论 | 第64-65页 |
| 7 致谢 | 第65-66页 |
| 8 参考文献 | 第66-78页 |
| 9 个人简历 | 第78页 |
